Milbenbekämpfung: Eine unendliche Geschichte?

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Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Milbenbekämpfung:
Eine unendliche
Geschichte?
02.05.11
Landwirtschaftszentrum Haus Düsse
Dr. Thorsten Arnold
Fachtierarzt für Tierhygiene
Bestandsbetreuung Wirtschaftsgeflügel
Fachtierarzt für Mikrobiologie
Molekularbiologie
www.gefluegelspezialist.de
Landwirtschaftszentrum Haus Düsse 02.05.11
Tätigkeitsfelder
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Legehennen
Legehennenelterntiere
Legehennenelterntieraufzuchten
Junghennenaufzuchten
Legehennenbetriebe
Brüterei
Broiler
Mastelterntiere
Mastbetriebe
Putenmast
Historisches
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Auflage von 1942
Historisches
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Historisches
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Etwas Satire!
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
„In Hühnereiern aus deutschen Legebetrieben wurden
hohe Nikotinrückstände gefunden.“
Vorteil:
Nikotinverseuchte Hühner kann man vor der
Schlachtung leichter einfangen ...
... sie können nicht so schnell davonlaufen
mit ihrem Raucherbein.
Gemeinschaftspraxis
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Die Vogelmilbe
Vogelmilben
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Klasse Arachnidae
Nord-Europa
Nord - Amerika
Europa
Ornithonyssus
sylviarum
Dermanyssus
gallinae
Nordische Vogelmilbe
Rote Vogelmilbe
Lebenszyklus
5-7 Tage
(Wirt erforderlich)
Lebenszyklus
4-9 Tage
(Temperaturabhängig)
Überlebensrate in der
Umwelt
3-4 Wochen
Überlebensrate in der
Umwelt
7-9 Monate
Ornithonyssus sylviarum
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Im
Gegensatz
zur
roten
Vogelmilbe
verbringt
die
nordische
Vogelmilbe
ihren
gesamten Lebenszyklus auf
dem Vogel. Dieser Zyklus besteht
aus Ei, der Larve, den nymphal
Stadien und dem Erwachsenen
und
kann
unter
idealen
Bedingungen innerhalb einer
Woche durchgeführt werden.
Dermanyssus gallinae
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männlich
weiblich
bis 0,7 mm
bis 1,1 mm
© www.hy-line.co.uk
©
www.bio.georgiasouthern.edu
©
www.bio.georgiasouthern.edu
© www.standardwellensittichzucht-lenk.de
Lebenszyklus (ca. 7 Tage)
Gemeinschaftspraxis
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Milbeneier
2-3 Tage (20°C und mehr)
Unter 9°C keine Entwicklung!
Larve mit sechs Beinen
24-36 Std.
0,5 mm lang
1. Häutung
Protonymphe mit acht Beinen
Blutsaugen nachts am Huhn
Deutonymphe
(8 Beine)
Blutsaugen
Keine Nahrung
tot
24-36 Std., 3. Häutung
Milbe
24-36 Std.
2. Häutung
Blutsaugen
12-36 Std.
3 – 7 Eier pro
Milbe
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Temperaturabhängigkeit des
Lebenszyklus der Milbe
STEINEGGER, Die Vogelmilbe
(Aus der Schweizerischen Lehr- und Versuchsanstalt für Geflügelzucht, Zollikofen-Bern, Direktor: Dr. P. Steinegger)
Die Vogelmilbe
(Dermanyssus avium)
Beobachtungen über die Temperaturabhängigkeit des Entwicklungszyklus
Von P. Steinegger und R. Berger, Ing. agr.
Dauer von der Blutaufnahme ausgewachsener Milben bis zum Legebeginn unter verschiedenen
Temperaturbedingungen. (Proben jeweils 15 ausgewachsene Milben*)
Probe
Nr.
Temperatur
erstes Ei Tage/Std. nach der
Probeentnahme
letztes Ei Tage/Std. nach der
Probeentnahme
1
2 °C
keine Eier
-
2
8 °C
keine Eier
-
3
12-15 °C
3 Tage
5 Tage
4
18 – 20 °C
24 Std.
72 Std.
5
32 – 35 °C
8 Std.
50 Std.
* Die Milben hungerten vorher 4 Wochen!
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Temperaturabhängigkeit des
Lebenszyklus der Milbe
STEINEGGER, Die Vogelmilbe
(Aus der Schweizerischen Lehr- und Versuchsanstalt für Geflügelzucht, Zollikofen-Bern, Direktor: Dr. P. Steinegger)
Die Vogelmilbe
(Dermanyssus avium)
Beobachtungen über die Temperaturabhängigkeit des Entwicklungszyklus
Von P. Steinegger und R. Berger, Ing. agr.
Dauer des Eistadiums (Zeitraum von der Eiablage bis zum Schlupf) bei verschiedenen Temperaturen.
Es wurden in verschiedenen Wiederholungen je 8 bis 15 Eier ausgelegt.
Probe
Nr.
Temperatur
erstes Ei Tage/Std. nach der
Eiablage geschlüpft
letztes Ei Tage/Std. nach der
Eiablage geschlüpft
1
2 °C
kein Schlupf
-
2
6 - 9 °C
kein Schlupf
-
3
9 - 14 °C
8 Tage
12 Tage
4
12-15 °C
5 Tage
8 Tage
5
18 – 20 °C
50 Std.
96 Std.
6
33 – 35 °C
36 Std.
48 Std.
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Problematik
Problematik
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• D. gallinae stellt in der Legehennenhaltung eines der
größten tierschutzrelevanten und wirtschaftlichen
Probleme dar.
• Kein Zugelassenes Arzneimittel mit 0 Tagen Wartezeit auf
Eier in Deutschland verfügbar!
• Diffizile rechtliche Situation beim Einsatz von Präparaten
die im besetzten Stall, aber nicht am Tier zugelassen sind.
• Eine Vielzahl von Produkten und sog. „Beratern“ sind mit
z.T. nachteiligen Folgen (Resistenzen) auf dem Markt
• Der Geflügelhalter befindet sich in einer oft schwierigen
Situation mit der Folge eines schlechten Gesundheitsstatusses seines Bestandes
Generelle
Vorsichtsmaßnahmen
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• Vor der Sprühbehandlung Futter und Wasser entfernen ?
• Während der Behandlung gelegte Eier sind zu entsorgen ?
• Wartezeit ?
?
?
?
Belastungen für die Tiere
- Tierschutz/reduzierte Produktivität -
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• Unruhe
• Reduzierte Gewichtsaufnahme
• Verhaltensstörungen
• Anämie Verluste
• Übertragung von Krankheitserregern
(Stichwort: Zoonose-VO)
• Einbruch in der Legeleistung
• Schmutzige Eier
Einfluss einer D. gallinae Infektion auf die Produktivität
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Influence of Dermanyssus gallinae and Ascaridia galli
infections on behaviour and health of laying hens Gallus
gallus domesticus).
Kilpinen O, Roepstorff A, Permin A, Norgaard-Nielsen G, Lawson LG, Simonsen HB
Br Poult Sci. 2005 Feb;46(1):26-34
The effect of infections with Dermanyssus gallinae (poultry red mite or
chicken mite) and Ascaridia galli (roundworm) on the behaviour and health
of laying hens was investigated. Six groups of 15 pullets (Isa Brown) were
kept in indoor pens from 18 weeks of age. Two groups were artificially
infected with D. gallinae, two groups with A. galli and two groups were kept
as uninfected controls. The hens were observed for behavioural reactions and
physiological changes (weight gain and various blood variables) to the
parasitic infections. nfections with D. gallinae resulted in reduced weight
gain, anaemia and even death of some of the hens. Behavioural changes
were also observed, as the mite-infected hens showed higher self-grooming
and head scratching both during the day and night. A. galli resulted in a
lower weight gain but no significant changes were seen in blood variables or
behavioural activities.
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Menschliche Gesundheit
- Mitarbeiterschutzwww.gefluegelspezialist.de
-
• Juckreiz
• Milbenstiche
• Allergien
• Übertragung von
Zoonose-Erregern
© www.cdfound.to.it
© www.birdmites.org
Folgende
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Infektions-Krankheiten
können nachweislich über
die „Rote Vogelmilbe“
übertragen werden.
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Kranheitsübertragung durch
D. gallinae www.gefluegelspezialist.de
Experimental infection of Salmonella Enteritidis by
the poultry red mite, Dermanyssus gallinae.
Valiente Moro C, Chauve C, Zenner L
Vet Parasitol. 2007 May 31; 146 3-4: 329-336
Dermanyssus gallinae is an important ectoparasite of laying hens in Europe and it is
suspected of being a vector of pathogens. We carried out an in vitro study to evaluate the
role of D. gallinae as a vector of Salmonella enterica subsp. enterica serotype Enteritidis.
Two means of infecting the mite were tested: through the blood meal and after cuticular
contact. Mites became carriers of Salmonella immediately after the infection with 29%
and 53%, respectively, for oral route and cuticular contact. This percentage increased
over time until it reached 95% (D7) and 80% (D14). The numerical identification of
bacteria on the selective medium SM ID demonstrated the multiplication of Salmonella
inside previously infected mites. In addition, transovarial passage as well as transstadial
passage (from N1 to N2 stages) were demonstrated. Moreover, the observation of a
negative effect of Salmonella on Dermanyssus oviposition was also observed. Finally,
previously infected mites were able to contaminate the blood during the blood meal.
Therefore, it appears that D. gallinae may act as a biological vector of S. Enteritidis
under experimental conditions. It may represent a suitable environment for the
development of Salmonella and could be an additional factor for the persistence of
salmonellosis infection between successive flocks.
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Salmonellenübertragung durch
die Rote Vogelmilbe
Detection of Salmonella sp. in Dermanyssus gallinae using an FTA filterbased polymerase chain reaction.
Valiente Moro C, Desloire S, Chauve C, Zenner L
Medical and Veterinary Entomology (2007), 21, 148-152
Salmonella spp. bacteria are responsible for some of the most important zoonoses worldwide.
Because Dermanyssus gallinae (DeGeer) (Acari: Dermanyssidae) has been recently reported to
be an experimental vector of Salmonella Enteritidis, it would be of benefit to evaluate the
presence of this bacterium in mites. A molecular detection tool associating a simple filter-based
DNA preparation with a specific 16S rDNA Salmonella sp. polymerase chain reaction (PCR)
amplification was described. The limit of detection with this method was 2 x 10(4) bacteria per mite.
To adapt this technique for large-scale studies, two sizes of mite pools were tested and a
preliminary investigation was carried out on mites from 16 currently or previously contaminated
farms. Mites sampled from one farm of each type were positive for Salmonella, suggesting that
Dermanyssus could act as a reservoir between flocks. In further investigations, it will be
necessary to carry out a large-scale study to assess the role of D. gallinae in the epidemiology of
avian salmonellosis.
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PCR-Methode um S. enteritidis in
Milben festzustellen www.gefluegelspezialist.de
D. gallinae
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
The poultry red mite, Dermanyssus gallinae, a potential
vector of Erysipelothrix rhusiopathiae causing
erysipelas in hens.
Chirico J, Eriksson H, Fossum O, Jansson D.
Med Vet Entomol. 2003 Jun;17(2):232-4
…. In poultry, erysipelas may cause sudden high mortality due to septicemia.
This communication describes the first isolation of E. rhusiopathiae from the
haematophagous poultry red mite, Dermanyssus gallinae DeGeer (Acari:
Dermanyssidae), that was collected on three farms where hen erysipelas was
diagnosed. The bacteria were isolated from the integument as well as from
the interior of the mites. Serotypes 1a and 1b of E. rhusiopathiae found in the
mites corresponded with those isolated from the diseased birds. These findings
imply that D. gallinae is a potential vector of E. rhusiopathiae. The current lack
of effective measures to control D. gallinae causes recurring mite problems in
poultry facilities once afflicted by this parasite. Consequently, mites containing
E. rhusiopathiae may act as reservoir hosts of this bacterium, allowing it to
persist in the poultry house between flock cycles as a source of infection for the
replacement pullets. The zoonotic potentials of both E. rhusiopathiae and D.
gallinae should also be considered.
Gemeinschaftspraxis
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D. gallinae www.gefluegelspezialist.de
Study of Dermanyssus gallinae as a carrier of
Pasteurella multocida.
Petrov D.
Vet Med Nauki. 1975;12(5):32-6.
Microbiologic studies and biologic experiments revealed that Pasteurella
multocida persists in the body of Dermanyssus gallinae mites after these
engorge with blood from infected birds. Depending on the temperature of the
environment the carrier status was shown to last from 42 to 64 days. It is
reported that the red mite acts as a vector and does not transmit Pasteurellae
directly. However, the parasite is potentially hazardous in maintaining and
passing on the infection through other indirect routes. Carrier status has been
established in naturally infected Dermanyssus gallinae mites.
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Bekämpfungsstrategien
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Grundsätzliche Maßnahmen die
es zu beachten gilt!
• Im leeren Stall vor dem Ausräumen der Einrichtungen alle Flächen
besprühen, um einen großen Teil der Milben, Nymphen, Larven und
Eier bereits zu vernichten.
• Ausräumen aller beweglichen Einrichtungen und des Nestmaterials,
um Verstecke wie Ecken, Auflageflächen usw. freizulegen.
• Wände und Einrichtungen (auch Gitterstäbe usw.) gründlich mit Druck
säubern, um Schmutz und verbliebene Milben wegzuspülen.
• Möglichst bald nach Neubelegung des Bestandes bevorzugte
Milbenverstecke/Sammelplätze intensiv besprühen, da evtl. noch
vorhandene Milben eine Blutmahlzeit benötigen und sehr aktiv werden.
• In warmen Ställen (+ 20°bis + 35°C) unabhängig von der Jahreszeit
regelmäßig alle 4 bis 6 Wochen mindestens die bevorzugten
Milbenverstecke/ Sammelplätze kontrollieren.
Bekämpfungsstrategien
Gemeinschaftspraxis
I.
Dres. Arnold
Chemische Bekämpfungstrategien
•
Für die Anwendung am Tier bzw. im
besetzten Stall zugelassene
Arzneimittel
•
Frei verkäufliche Mittel für den
besetzten Stall
•
Frei verkäufliche Mittel für den
unbesetzten Stall
II.
Biologische Bekämpfungsstrategien
•
Verschiedenste Kräuterextrakte
III.
Physikalische Bekämpfungsstrategien
•
Erhitzen des Stalles
•
Ausbringung von flüssigem Stickstoff
IV.
Biophysikalische Bekämpfungsstrategien
•
Amorphes Kieselgur
Biophysikalische Verfahren
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amorphes Siliciumdioxid (100 %)
z.B. Biobeck PA 910®, InsetoSec®
Flüssig auszubringende Präparate: (Indispron® D 110)
Siligur F - 46
Inter ®Silikatlsg.
Wirkungsmechanismus:
Wirkstoff:
Siliciumdioxid dringt in die Atmungsorgane der Milben ein und es kommt
zu einer Austrocknung von Innen heraus.
Darüber hinaus blockieren die feinen Sliciumdioxid-Kristalle die Gelenke
und führen damit zu einer Immobilisierung der Milben.
Eine Teilchengröße von 2 µm bis 4 µm garantiert die beste Effektivität.
Aufwandmengen
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Kleingruppe/Voliere:
m2 x 2,5 x 0,4 = Gebrauchslösung
Bodenhaltung:
m2 x 1,5 x 0,4 = Gebrauchslösung
Kleingruppe
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Was ist bei der Ausbringung
geeigneter Präparate zu
beachten!
Ausbringung des Milbenmittels
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
„Entscheidend für eine erfolgreiche
Milbenbekämpfung unter
Praxisbedingungen ist nicht nur die
Auswahl des richtigen Mittels sondern
auch die professionelle Ausbringung
durch motivierte Mitarbeiter.“
Ausbringung
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Ausbringung
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Ausbringung
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Extremer Milbenbefall
- Bilder aus der Sektion -
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Resistenzen
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Resistenz gegen Organophosphate
und Karbamate
• Resistenz beruht auf einer Modifikation der
Acethylcholinesterase
• Es kommt zu einer strukturellen Veränderung der
Acetylcholinesterase, so dass Organophosphate und
Karbamate nicht mehr greifen können
• Für einige Insekten/Schädlinge ist die Region auf der diese
Veränderungen lokalisiert sind bereits characterisiert
• Es handelt sich um eine Mutation im ace Gen das für die
Acethylcholinesterase kodiert
• Meist sind sogar nur einzelne Aminosäuren ausgetauscht
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Wirkmechanismus versus
Resistenz
Acetylcholinesterase
Phosphorylenzym
(hydrolysiert den Neurotransmitter)
(paralyse ist die Folge)
Acetylcholin (Neurotransmitter)
Organophosphate/Karbamate
Entstehung von Resistenzen
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
• Exzessiver und unkontrollierter Einsatz von Organophosphaten und Karbamaten in der Vergangenheit.
• Ausbringung von zu geringen Mengen in den Ställen und
damit auch zu geringen Dosierungen.
• Schnelle Etablierung von sehr großen Milbenpopulationen
in den Beständen unter optimalen Bedingungen und damit
optimale Bedingungen für die Entstehung von resistenten
Populationen.
• Einsatz von Schädlingsbekämpfungsmitteln in leeren
Ställen (Serviceperiode) mit ähnlichem Wirkungsspektrum
wie Organophosphate und Karbamate (z.B. Danadim
Progress)
Danadim® progress
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
• Handelsname: Danadim® Progress
• Verwendung des Stoffes / der Zubereitung: Akarizid/Insektizid
• Hersteller/Lieferant: Stähler Deutschland GmbH & Co. KG
Stader Elbstrasse
D-21683 Stade
• Wirkstoff: Dimethoat (ISO)
(Phosphorsäureester)
• Wirkung: Phosphorsäureester sind Hemmer der
Cholinesterasen (Acetylcholinesterase (AChE) und
Butyrylcholinesterase (BuChE)).
Kontaktgifte
Gemeinschaftspraxis
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Resistenztest
Milbenresistenztest, Variante A
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Simulierung einer Sprühbehandlung
• etwa 30 – 50 aktiv bewegliche Vogelmilben werden zwischen zwei
Filterpapierscheiben („Sandwichmethode“) in die jeweiligen zu
prüfenden Mittel und Konzentrationen für eine Minute eingetaucht
• danach getrocknet und mittels Pinsel in frische Filterpapiertüten
überführt
• die Tütchen werden milbendicht verschlossen und für 24 Stunden
bei 28°C und 90 % relativer Feuchte aufbewahrt
• danach werden die Tütchen geöffnet und die Mortalität der
Vogelmilben durch einfaches auszählen ermittelt.
• es wird eine unbehandelte Kontrolle und eine Lösungsmittelkontrolle
mitgeführt
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Simulierung einer behandelten Unterlage
• Filterpapiere werden zu Tütchen gefaltet und in die zu
prüfenden Mittel bzw. Konzentrationen getränkt (imprägniert),
danach für 24 Stunden getrocknet
• danach werden die Tütchen mit etwa 30-50 Vogelmilben
beschickt
• die Tütchen werden milbendicht verschlossen und für 24
Stunden bei 28°C und 90 % relativer Feuchte aufbewahrt.
• danach werden die Tütchen geöffnet und die Mortalität der
Vogelmilben durch einfaches auszählen ermittelt.
• es wird eine unbehandelte Kontrolle und eine Lösungsmittelkontrolle mitgeführt!
Gemeinschaftspraxis
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Milbenreisistenztest, Variante B
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
ca. 50 Milben
5 ml des zu testenden Produktes
Einwirkungszeit zwischen 1 – 5
Minuten
Verdünnung und
Neutralisierung
des Produktes mit
Wasser.
Filter wird aus der Halterung genommen und in eine
Petrischale gelegt, die Milben werden gezählt und dann
erneut nach 24 Std. gezählt (lebend + tot).
Milbenreisistenztest
publiziertes Standardverfahren
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Assessment of susceptibility of the poultry red mite Dermanyssus
gallinae (Acari: Dermanyssidae) to some acaricides using an adapted
filter paper based bioassay
B.B. Thind and H.L. Ford
Central Science Laboratory, Department for Environment, Food and Rural Affairs,
Sand Hutton, York
A previously described bioassay was modified to assess the response of the poultry red mite, an
important ectoparasite of fowl, to a selected group of acaricides. The adapted bioassay is simple to
use, escape-proof and provides data that can be subjected to probit analysis. The reproducibility of
the method was assessed by three tests with α-cypermethrin against a reference strain, which
produced dose-response lines that did not differ significantly (χ2 = 1.39, 2 d.f., p = 0.50), and had a
derived common slope of 1.89. In addition, a limited evaluation study enabled assessment of
response to commercial formulations of bifenthrin, bifenthrin + malathion and cypermethrin by field
populations of the poultry red mite.
Milbenreisistenztest
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Milbenresistenztest
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Vorteile des neuen Verfahrens:
• International anerkanntes Verfahren
• Standardisierbares Verfahren
(Akkreditierung des Verfahrens in unserem Veterinärlabor ist erfolgt)
• Ermöglicht intensives Monitoring
• Hoher Durchsatz möglich
• Anwendbar auf verschiedenste zu testende Produkte.
Gemeinschaftspraxis
Dres. Arnold
Vielen Dank für Ihre
Aufmerksamkeit!
Ich freue mich auf Ihre Fragen!

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