Forschung zur Influenza und Influenzaviren am Robert Koch
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Forschung zur Influenza und Influenzaviren am Robert Koch
Forschungs-Sofortprogramm Influenza (FSI) am Robert Koch-Institut Nationales Symposium für Zoonose-Forschung 07./08. Oktober 2009 Priv.-Doz. Dr. Thorsten Wolff; RKI, FG17 2 Humane Influenza Pandemien 1918 (H1N1) 1957 (H2N2) 1968 (H3N2) H5 ? FSI SO-Asien Aviäre Influenza H5N1 H7N7 Europa 60% Mortalität NL Saisonale Epidemien A/H1N1 A/H3N2 Typ B 1995 1997 2000 2003 2006 3 Forschungs-Sofortprogramm Influenza H5N1-Vogelgrippe und Pandemiegefahr (2006-09) Das Forschungsvorhaben dient dazu, • Defizite in der wissenschaftlichen Erkenntnis abzubauen, • die Notwendigkeit und Zuverlässigkeit risikominimierender Maßnahmen zu beurteilen, • die Grundlagen der wissenschaftlichen Politik-Beratung weiter zu verbessern. Projektbereiche (RKI): I. II. III. IV. Epidemiologie Schnelldiagnostik Pathogenese und Tenazität Impfstoffentwicklung (zusammen mit PEI) (Sponsoren: BMG, BMELV, BMBF) 4 Projekt II.1: Entwicklung eines Schnelltestes zum Nachweis von Subtyp-H5-Viren (NRZ) Einsatz im Schnelltestformat (t = 30 Min.) : H5-Spezifität hohe Sensitivität dank PolyHRP-Technologie Nachweisgrenze des H5-ABICAP® << 1 HA: deutlich sensitiver als bisherige Schnellteste Abicap®, Senova GmbH Optimierte Antikörperpaarung im ELISA: Fang-/Detektions-mAk: 140/1/D9 – Mix mit 10/1/D6, 157/1/F4 Spezifität: HPAIV H5N1 9/9 H5N2, H5N6 0/2 andere HA-Subtypen (H1-H16) 0/19 Influenza B-Viren 0/2 respiratorische Viren 0/26 Staphylo-/Streptokokken 0/16 Linke, Neubauer et al. 5 Projekt II.2: Schnelle Differenzierung von H5N1 Varianten durch Pyrosequencing (NRZ Influenza) WHO, Februar 2008: 1 10 Clades 2.3.2 2.3.4 Molekulare Marker 2.1 + 2.2 Cladespezifische Substitution 6 Projekt II.2: H5-Clade/Subclade Differenzierung in Pyrosequencing (PSQ)-Assays PCR 1 PCR 2 HA 1 Clade PSQ 1 Subclade PSQ 2 Substitution PSQ 3+4 HA 2 HA-Spaltstelle PSQ 5 Molekulare Marker + Clade-spezifische Substitution • Kombination von zwei PSQ-Assays ermöglicht spezifische Differenzierung von 7 H5N1-Subclades inkl. 1, 2.1, 2.2, 2.3 • Erfolgreiche Evaluation in WHO-Ringversuchen M. Wedde, B. Schweiger et al. 7 Projekt II.2b: Genotypische Resistenzbestimmung (NRZ) Neuraminidase-Inhibitoren Adamantan-Derivate Oseltamivir Tamiflu Amantadin Symmetrel Zanamivir Relenza Rimantadin Flumadine Resistenz-assoziierte Aminosäuren PSQ-Assays zur genotypischen Resistenzbestimmung Neuraminidase: E119 H1N1: H274Y R292K N294S H5N1: H274Y V119 GAGAA GAGTA H3N2: E119V R292K N294S M2 Protein: L26F V27A/D A30T S31N G34E Duwe & Schweiger, 2008. J Virol Methods 8 % resistente Viren Projekt II.2b: Zirkulation von Oseltamivir-resistenten saisonalen A/H1N1 Viren (NRZ) Mutation: H274Y 100 80 60 40 20 0 Oct Nov Dec Jan Feb Mar Oct Nov Dec Jan Feb Mar 07 07 07 08 08 08 08 08 08 09 09 09 • Zanamivir- und Adamantan-sensitiv • nicht Therapie-assoziiert • Symptome und Verlauf der Infektion unverändert • Mensch zu Mensch Übertragung gezeigt Duwe et al. 2009, J Clin Virol 9 III.1: Das C-terminale ESEV Motiv des NS1 Proteins ist keine Virulenzdeterminante des H5N1-Virus (P15) Stopp NLS I dsRNA binding domain 73 215 225 Reverse Genetik: Infektion: 5 PFU (10x LD50) WT (A/Vietnam/1203/04) -ESEV (aviär) = PDZ Bindungsmotiv RSKV (human) Obenauer et al., 2006; Science 311. 1576 „We propose that the introduction of avian NS1 into human cells can potentially disrupt many cell pathways via binding to PDZ-domain containing proteins, while the human NS1 does not. Disruption of these pathways at the cellular level may well contribute to the higher mortality rates reported for the recent outbreaks.“ BSL3: Isocage-System Zielecki, Semmler et al., in preparation 10 Influenzvirus A/H1N1-2009 (seit April 2009) („Swine Flu“, „Mexican Flu“) WHO/ECDC: > 343.298 Fälle, 4432 Opfer (27.09.09) 11 Das neue Influenzvirus A/H1N1-2009 ist verwandt mit porzinen Virusstämmen (MMWR, 21. April 09) Classical swine North-American avian Human (H3N2) Eurasian avianlike swine • Geringe Nachweisbarkeit durch Standard-Diagnostik: - RT-PCR, Antigen-Schnelltest, Therapierbarkeit ? • Symptomatik/Infektiösität ? • Eindämmungs-Strategie ? Influenza A (H1N1) (Neumann et al., 2009) 12 Real-time PCR zum Nachweis von A/H1N1v Bestellung von Primer/Sonden 27. April 2009 Assay-Evaluierung im NRZ Assay übermittelt an Gesundheitsämter 30. April 2009 Assay auf der RKI-Hompage 1. Ma 2009 13 Situation in Deutschland: 21.283 gemeldete Fälle (02.10.2009) Ende April Eindämmung/Verzögerung September Schutz vulnerabler Gruppen RKI: Epid. Wochenbericht, 02.10.09 14 I.3: Modellierung: Rasche Detektion, Isolation und Therapie verzögern den epidemischen Peak (Abt. 3) d81 d136 Modell-Annahmen für Deutschland (R0 = 1.58) - Zwei importierte Fälle / Tag - Reduktion der Transmission liegt bei 75% für die ersten 1.000 Fälle und bei 50% für den 1001. - 10.000ten Fall An der Heiden et al.; Plos One, in revision 15 I.2 Shedding-Studie: Symptomatik/ Infektiösität bei A/H1N1v ? (Abt. 3) • • • • Bei Übermittlung eines neuen Falls: Kontaktaufnahme von RKI mit Land, Gesundheitsamt und Familie Aussendung eines Feldteams Tägliche Beprobung des Haushalts-Index (N = 36) und aller Haushaltskontakte (N=83) Tägliche Befragung des Haushalts-Index und der Haushaltskontakte: • Symptomatik • Medikation (Abt. 3; U. Buchholz & Kollegen) 16 I.2 Shedding-Studie: Evidenz für Empfehlungen • RKI-Empfehlung (18.08.2009): „Alle Erkrankte bleiben bis einen Tag nach Abklingen des Fiebers zuhause“: – Relatives Risiko, dass ein laborbestätigter Patient Virus ausscheidet, wenn er fieberfrei ist: 0.56 (p=0.006) Fieberfreiheit ist mit fehlender Ausscheidung assoziiert Tage RNA copies symptom score Nachweisgrenze MW(ohne Null)*PR Symptomscore - MW RKI shedding investigation group, Emerg. Infec. Disease, in revision 17 Projekt I.4: Das Informationspaket „Wir gegen Viren“ Medien mit ausführlichen Informationen zum persönlichen Infektionsschutz Kampagnen-Logo www.wir-gegen-viren.de Webseite Broschüre 9 Tipps Faltblatt 9 Tipps Poster 9 Tipps Medien zum Schwerpunktthema Händewaschen TV-Spot Händewaschen Aufkleberaktion Händewaschen G. Meilicke, C. Bartels et al., IBBS 18 Nationales Symposium zur Influenzaforschung Berlin, 22.-24. November 2009 INFLUENZA • FSI-Abschlussveranstaltung • Treffen des FluResearchNets Information/Anmeldung: www.zoonosen.net 19 Das FSI bedankt sich bei den Sponsoren für die Unterstützung ! 20 II.2b: Resistenzen bei neuen A/H1N1v Viren ? • RT-PCR mit anschließender PSQ-Analyse etabliert Neuraminidase 274 Stand: 01. Okt. 2009 • 326/326 NAI sensitiv • 115/115 Amantadin-resistent M2 Protein 26, 27, 30, 31, 34 294 292 Duwe, Schweiger et al. 21 Humane Influenza Pandemien 1918 (H1N1) 1957 (H2N2) 1968 (H3N2) H1N1v Aviäre Influenza H5N1 H7N7 SO-Asien Europa NL, B, D Saisonale Epidemien A/H1N1 A/H3N2 Typ B 1995 1997 2000 2003 2005 2009 2010 22 II.1 Entwicklung eines Schnelltestes zum Nachweis von Subtyp-H5-Viren (NRZ) Ziel: Etablierung eines Antigen-Capture-Assays zum laborunabhängigen Nachweis von H5-Asia Viren Methodik: Generierung H5-spezifischer mAbs Resultate: 7 mAbs hochspezifisch für Subtyp H5-Viren 2 mAbs neutralisieren H5N1 Viren 1 mAb zeigt spezifisches Färbemuster im IFT 23 II.3 Nachweis und Differenzierung von Influenza Viren mittels BioChip Influenza BioChip 100% 1 0 3 5 19 1 19 0 1 3 78 2 80% 60% 83 Influenza BioChip 6 76 84 65 40% 21 60 10 20% 0% AM H1 N1 H3 N2 H2 H5 H7 H9 BM 84 89 89 79 79 6 22 12 3 78 positive negative Sensitivität des BioChips im Vergleich zur Real-time PCR eBioChip • mobiles flexibles System für Diagnostik und Differenzierung • vergleichbare Sensitivität mit real-time PCR 24 Projekt: II.2 Schnelldiagnostik und Differenzierung von H5N1 Varianten (NRZ Influenza) 2.2 1 + 2.3 0+3-9 2.1