Apresentação sobre Métodos de coleta em caninos e felinos
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Apresentação sobre Métodos de coleta em caninos e felinos
PROCEDIMENTOS PARA COLETA EM CANINOS E FELINOS INTRODUÇÃO Uma das principais finalidades dos resultados dos exames laboratoriais é esclarecer as dúvidas durante a anamnese e exame físico realizado pelo Veterinário. Para que o laboratório clínico possa atender este propósito é indispensável que o preparo do paciente, a coleta, o transporte e a manipulação dos materiais obedeçam as determinadas regras. INTRODUÇÃO • Variação Cronobiológica (diário, mensal, sazonal, anual ou outros) • Gênero (machos e fêmeas) • Idade (parâmetros hematológicos e bioquímicos) • Espécie • Jejum • Aplicação do torniquete (alterações metabólicas) INTRODUÇÃO • • • • • Procedimentos diagnósticos e terapêuticos Infusão de fármacos Gel separador (interferência) Hemólise Lipemia DROGAS TERAPÊUTICAS • Sempre coletar no horário da maior concentração da meia vida plasmática do medicamento ou efeito que provoca no organismo – Fenobarbital (6 horas após) – Digoxina (6 horas após) – Insulina (Glicose) – Levotiroxina (T4 – 4 a 6 horas) HORMÔNIOS • Cortisol (Sempre coletar basal pela manhã) – Supressão a dexametasona baixa dose (0,01 mg/Kg) • 2 dosagens (basal e 8 horas) • 3 dosagens (basal, 4 e 8 horas) – Supressão a dexametasona alta dose (0,1 mg/Kg) • Igual baixa dose – Estimulação ao ACTH (0,005mg/Kg) • IV = 1 hora pós • IM = 2 horas pós • Reposição com T4 – Coleta basal e 4 a 6 horas após medicação HEMÓLISE • • • • • Pré coleta Coleta Armazenamento Formação do coágulo Processamento (preparo) • Espécie • Raça (Akita e Shiba) – ↑ Potássio LIPEMIA • Jejum • Algumas doenças COLETA • • • • Identificação Jejum Medicação Posicionamento SISTEMA A VÁCUO • • • • Fácil manuseio Qualidade Segurança Veias de pequeno calibre • Alto custo SERINGA E AGULHA • Qualquer calibre • Custo mais baixo • Materiais facilmente encontrados • Proporção sangue/aditivo • Maior atenção e cuidado PUNÇÃO VENOSA EM CÃES VEIA SAFENA VEIA CEFÁLICA PUNÇÃO VENOSA EM CÃES VEIA JUGULAR PUNÇÃO VENOSA EM FELINOS VEIA JUGULAR COM FELINO DEITADO PUNÇÃO VENOSA EM FELINOS VEIA FEMORAL VEIA JUGULAR PUNÇÃO VENOSA ADEQUADA Correta angulação da agulha (30 º) e correto posicionamento do bisel DIFICULDADES ENCONTRADAS Interrupção do fluxo sanguíneo DIFICULDADES ENCONTRADAS Transfixação da veia Tansfixação da veia Penetração parcial do bisel na veia DIFICULDADES ENCONTRADAS Estenose venosa ou colabamento da veia CÓDIGOS ALFA E CÓDIGOS DE CORES RECOMENDADOS PARA IDENTIFICAÇÃO DOS ADITIVOS (SOCIEDADE, 2005) ADITIVOS CÓDIGO ALFA EXAMES MAIS COMUNS CÓDIGOS DE CORES EDTA Sal dipotássico Sal tripotássico Sal dissódico K2 E K3 E N2 E Lilás Lilás Lilás Hemograma Plaquetas EDTA Sal dipotássico com gel separador K2 E Branca translúcida Biologia molecular Citrato Trissódico 9:1 9NC Azul claro Testes de Coagulação Citrato Trissódico 4:1 4NC Preta Velocidade de Hemossedimentação Fluoreto/Oxalato FX Cinza Glicose Fluoreto/EDTA FE Cinza Glicose Fluoreto/Heparina FH Verde Glicose Heparina de Lítio LH Verde Exames bioquímicos em geral, gasometria (seringa pré heparinizada) Heparina de Sódio NH Verde Exames bioquímicos em geral CPDA Amarela Preservação de células Z Vermelha Exames sorológicos e bioquímicos em geral Amarela/Vermelha Exames sorológicos, bioquímicos em geral, drogas terapêuticas e hormônios Citrato Fosfato Dextrose Adenina Siliconizado Ativador de coágulo e gel separador Ativador de coágulo AÇÃO DOS ANTOCOAGULANTES • EDTA – Quelante de cálcio • CITRATO – Liga-se ao cálcio (reversível) • HEPARINA – Inibe a conversão de protrombina em trombina (fibrinogênio), inibindo a ação da antitrombina III • FLURETO – Inibição da enolase, sempre associado a um anticoagulante ANTICOAGULANTES • EDTA (Roxa, Lilás) – – – – – – – Hemograma (Reticulócitos, Plaquetas) Uréia e creatinina ALT, AST e GGT Algumas sorologias PCR Exames toxicológicos Amônia, ACTH, BNP (rápida separação e congelamento) • Citrato (Azul) – – – – – – Fatores de coagulação (Separar o plasma rapidamente) Plaquetas Hemograma aves e répteis VHS Mesmo EDTA Cuidado com a proporção Sangue/Aditivo ANTICOAGULANTES • HEPARINA DE LÍTIO (Verde) – – – – Hemograma (realização rápida do esfregaço sanguíneo) Aves e répteis Praticamente todos os bioquímicos Exames toxicológicos • FLUORETO (Cinza) – Não é um anticoagulante sempre associado a um (EDTA, Citrato) – Dosagem de Glicose e lactato • COM OU SEM ADITIVO/GEL SEPARADOR – – – – Sorologias/Hormônios Bioquímicos (exceção do lactato e amônia) Drogas terapêuticas (24 horas para separação) Cálcio ionizado e ECO2 (mínimo2/3 tubo + Anaerobiose) TUBOS PARA COLETA Efeito do EDTA K3 nos Parâmetros Celulares Vermelhos Volume de amostra em um tubo para 4 ml de sangue Parâmetros 4 ml 1 ml 0,5 ml Diferença (0,5 ml) Hematócrito (%) 56,3 52,8 51,9 7,8 % Hemácias (milhões/mm³) 7,61 7,30 7,36 3,2 % Hemoglobina (g/dL) 18,3 17,8 17,7 3,2 % 74 72,3 70,5 4,7 % 32,5 33,7 34,2 5,2 % VCM (fL) CHCM (g/dL) TUBOS PARA COLETA Tubos para obtenção de soro sanguíneo Tubos para a obtenção de sangue total e plasma sanguíneo TUBOS PARA COLETA Amostras 10 ml de sangue em tubo para 10 ml 3 ml de sangue em tubo para 10 ml 1 ml de sangue em tubo para 10 ml 3 ml de sangue em tubo para 3 ml Amostras 3 ml de sangue em tubo para 3 ml 2 ml de sangue em tubo para 3 ml 1 ml de sangue em tubo para 3 ml 3 ml de sangue em tubo para 10 ml Resultado de TCO2 19,56 ± 1,89 17,53 ± 1,28 15,85 ± 1,33 19,16 ± 1,89 Volume de amostra X resultado TCO2 em caninos Resultado de TCO2 15,78 ± 1,11 15,33 ± 1,14 14,32 ± 1,34 14,96 ± 1,02 Volume de amostra X resultado TCO2 em felinos TUBOS PARA COLETA Tubos para coletas de pequeno volume de amostra Sistema para coleta de sangue por gotejamento TUBOS PARA COLETA PROCEDIMENTOS CORRETOS Distribuição do sangue nos tubos para coleta com seringa e agulha Homogeneização dos tubos para correta distribuição dos aditivos e/ou anticoagulantes ESTABILIDADE DA AMOSTRA • Refrigeração X Congelamento X Temperatura ambiente • Manuseio • Tempo TRANSPORTE • • • • • • Preparo do material Centrifugação Armazenamento Material para transporte Estabilidade ?????? Meios de transporte da amostra HEMOCULTURA • Pico febril • Tamanho do animal • Correta antisepsia do frasco e paciente • Coletar em locais diferentes • Cada mililitro de sangue 3 % a mais de chance GASOMETRIA • • • • Material para coleta Conservação Transporte Heparina Lítio X Sódica X Balanceada • Venoso X Arterial • Procedimento URINA • Micção espontânea • Sondagem uretral • Cistocentese SONDAGEM URETRAL SONDAGEM URETRAL CISTOCENTESE • • • • Região anatômica. Ou na sorte ????? Palpação Guiada por US Cuidados: – – – – – – Tumores em bexiga Ciscite enfisematosa Aumento de órgãos internos (Fígado, Baço etc) Animais muito agitados Animais obstruídos ou com dificuldade de urinar (bexiga distendida) Machos • Pênis • Veias – Fêmeas • Aumentos uterinos SONDAGEM URETRAL Região anatômica CISTOCENTESE Palpação • Muito utilizada em gatos e caninos quando filhotes • Dificuldade em caninos pela musculatura abdominal CISTOCENTESE Guiada por US ENVIO • • • • • Tubos cônicos Seringa Coletor Universal Tubos estéreis e secos Frascos ou tubos com conservantes • Não enviar em frascos com ativador de coágulos e/ou gel de separação CONSERVAÇÃO • Conservar em temperatura de 6 a 8 °C (geladeira) • Boa conservação e até 12 horas, mas não passar de 24 horas para análise • Ideal que a urina seja analisada em até 2 horas após a coleta • Quando analisar amostra refrigerada esperar chegar a temperatura ambiente • Período prolongado da análise entre a coleta pode provocar alterações químicas e/ou destruir ou formar cristais PESQUISA DE ECTOPARASITAS • Raspado de pele profundo com o auxílio de uma lâmina de bisturi – Utilização de óleo mineral para facilitar a remoção mecânica e visualização no microscópio. • Fita adesiva • Swab estéril PESQUISA DE ECTOPARASITAS Coleta PESQUISA DE ECTOPARASITAS Envio e conservação PESQUISA DE ECTOPARASITAS Envio e conservação CITOLOGIA • • • • • Uso de um citoaspirador em aumento de volume Swab estéril em lesões, mucosas ou tumores esfoliativos Seringa e agulha Apenas agulha Realização do esfregaço CITOLOGIA Coleta CITOLOGIA Coleta ROLAMENTO TIPO “ESFREGAÇO SANGUÍNEO” • Realizado para materiais líquidos um pouco mais densos • Realizar com uma lâmina para confecção de esfregaço ou lamínula FITA ADESIVA • Para coleta de materiais superficiais, muito utilizado para citologias de pele. • Utilizar uma fita adesiva dupla face de boa qualidade • Colar uma face na lâmina e na outra face fazer leves pressões no local afetado • Corar a lâmina com a fita adesiva CULTURA E ANTIBIOGRAMA • Verificar uso de antibióticos tópico ou por via oral • Intervalo de 3 dias para banhos e 7 a 10 dias quando utilizado substâncias antisépticas • Limpeza com solução fisiológica a área afetada • Remoção de crostas e tecido morto • Realização de lâmina para confecção de GRAM CULTURA E ANTIBIOGRAMA CULTURA E ANTIBIOGRAMA CULTURA CULTURAFÚNGICA E ANTIBIOGRAMA • Verificar a utilização de antifúngicos sistêmicos ou tópicos • Coletar das lesões e bordos • Frascos: Coletor universal, frascos estéreis ou diretamente em meios para crescimento fúngico. • Conservação: Temperatura ambiente livre de umidade e raios solares CULTURA E ANTIBIOGRAMA CULTURA E ANTIBIOGRAMA TRICOGRAFIA • Exame realizado como auxílio de lesões nos pelos onde se avalia a morfologia ciclo biológico que eles se encontram • Coletar o material por arrancamento no sentido de crescimento do pelo • Local: No meio da lesão • Frasco para coleta: Coletor Universal ou frasco estéril • Conservação: Temperatura ambiente PARASITOLÓGICO DE FEZES • Coletor universal • Pedido de acordo com a suspeita – Wilis e Faust (ovos) - ovos leves – Sheather (Solução de açúcar) ou Coloração de Ziehl Neelsen • Cryptosporidium – Hoffman e Agua éter (ovos pesados) • Platynosomum, Aelurostrongylus etc • Fezes de felinos podem estar com areia • Não aceitar amostra em saco plástico, envoltos por papel absorvente (papel toalha, guardanapos entre outros), luvas de procedimentos – Segurança para atendentes, veterinários e proprietários PARASITOLÓGICO DE FEZES • SEMPRE separar vermes ou outras estruturas parecidas em outro frasco (ou descrever na requisição) – Conservar em álcool 96ºC ou formol 10% • Conservação: Refrigeração (6 a 8 °C) – Amostras viáveis por até 48 horas ???