EFEITOS DE UMA INFECÇÃO CAUSADA POR
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EFEITOS DE UMA INFECÇÃO CAUSADA POR
P6-EFEITOS DA INFECÇÃO CRÔNICA PELO Toxoplasma gondii SOBRE O NÚMERO DE NEURÔNIOS DO PLEXO SUBMUCOSO DE RATOS PÂOEAGUA1, Ederson Camilo; GÓIS2, Marcelo Biondaro, ARAÚJO3, Eduardo José de Almeida; SANT’ANA4, Débora de Mello Gonçales. E-mail: [email protected] 1- Acadêmico do Curso de Enfermagem, UNIPAR, Umuarama, Paraná. 2- Biólogo, Mestre em Ciência Animal, UNIPAR, Umuarama, Paraná. 3- Biólogo, Doutor em Ciências Biológicas, UEL, Londrina, Paraná. 4- Farmacêutica, Doutora em Ciências Biológicas, UEM, Maringá, Paraná. Resumo Objetivou – se investigar as alterações causadas pela infecção experimental por oocistos de T. gondii em neurônios do plexo submucoso no jejuno de ratos. Dez ratos foram distribuídos em dois grupos experimentais: Controle GC (n=10) e infectado GI (n=10) inoculado por via oral com 500 oocistos de T. gondii da cepa (ME-49). Preparados totais da tela submucosa foram submetidos a técnica de Giemsa para marcação de neurônios. A análise quantitativa demonstrou que não houve alterações significativas na população neural (p >0,05). Conclui-se que a infecção induzida por oocistos de T. gondii (ME-49) não levou a redução ou ao aumento no número de células nervosas do plexo submucoso do jejuno dos ratos que foram infectados. Palavras-chave:sistema nervoso entérico, plexo submucoso, toxoplasmose. Introdução O trato gastrointestinal possui um sistema nervoso próprio, denominado sistema nervoso entérico (SNE), localizado inteiramente na parede intestinal, desde o esôfago até o ânus, que sofre influencia do sistema nervoso central, mas independe dele para realizar suas ações.1 O SNE é constituído por dois plexos ganglionados: um plexo externo disposto entre as camadas musculares longitudinal e circular, denominado plexo mioentérico e um plexo interno, denominado de plexo submucoso. O plexo mioentérico controla basicamente os movimentos gastrointestinais, como: aumento da contração tônica da parede intestinal, da intensidade das contrações rítmicas e da velocidade de condução das ondas excitatórias ao longo da parede do intestino2. Diferente do plexo mioentérico, o plexo submucoso é responsável pelo controle na parede interna de cada segmento do intestino, ajudando no controle da secreção intestinal local e a absorção3. A secreção no epitélio intestinal é coordenada pela ação do plexo submucoso sob a produção de mediadores químicos que regulam a mucosa intestinal no intuito de ampliar a resposta imunobiológica, facilitar o transito intestinal e promover uma ação direta a agentes infecciosos, como bactérias, helmintos e protozoários, dentre esse ultimo o Toxoplasma gondii4. O T. gondii é um parasito intracelular obrigatório, de distribuição geográfica mundial, responsável pela doença denominada toxoplasmose. Além dos seres humanos, esta zoonose é freqüente em varias espécies de animais, como os mamíferos e as aves, considerados hospedeiros intermediários do parasito5. A transmissão do T.gondii pode ocorrer através da ingestão de oocistos presentes no solo, areia, água, verduras, contaminados com fezes de gatos infectados, ingestão de cistos presente em carne crua ou mal cozida6. O T. gondii possui três estágios principais de desenvolvimento: os taquizoítos, forma encontrada durante a fase aguda da infecção e poucos resistentes ao suco gástrico; os bradizoítos, é a forma encontrada durante a fase crônica da doença em vários tecidos, principalmente no cérebro, retina e músculos esqueléticos e cardíaco; e os oocistos, que é a forma mais resistente, produzidos nas células intestinais dos felídeos e eliminados imaturos junto com as fezes7. O objetivo desse trabalho foi avaliar os efeitos de uma infecção experimental por oocistos de T. gondii, sobre o número de neurônios do plexo submucoso de ratos infectados. Material e métodos Foram utilizados 10 ratos (Rattus novergicus) machos Wistar com 60 dias de idade e 258,58 ± 13,64g massa corporal. Os animais foram separados em dois grupos experimentais: grupo controle GC (n=5), administrado via oral 1 mL de solução salina estéril 0,9%, grupo infectado GI (n=5), inoculados via oral com 500 oocistos esporulados artificialmente de T. gondii (cepa ME-49 genótipo II) ressuspendidos em 1 mL de solução salina 0,9%. Os animais foram mantidos em biotério com temperatura e umidade controladas e foto-período de 12 horas por 36 dias, recebendo água e racão ad libitum. Após, os animais foram submetidos á eutanásia por aprofundamento anestésico com vapor de halotano8. Por laparotomia, o jejuno foi removido, observando seu limite proximal na flexura duodenojejunal e prega íleo-cecal como limite distal. Um segmento de aproximadamente 5 cm do órgão foi lavado em solução salina a 09%, preenchido e imerso em solução fixadora de formol acético por 48 horas. Preparados totais da tela submucosa foram obtidos através da dissecação da túnica mucosa e da túnica muscular sob estereomicroscópio com transiluminação. Após, foram submetidos à técnica de Giemsa9. Utilizando-se microscópio de luz Motic BL, com aumento de 400x, foram realizadas análises quantitativas dos neurônios submucosos. Foi contado o número de gânglios em 50 campos microscópicos, número de neurônios por gânglio em 50 gânglios e o número total de neurônios em 50 campos microscópicos. Foram considerados gânglios, aqueles que apresentassem 3 ou mais neurônios evidenciados pela técnica de Giemsa. Os dados obtidos foram analisados por ANOVA um critério, comparados pelo teste t de student, utilizando o software Bioestat 5.010 , considerando α=0,05. Resultados e discussão Os resultados da análise quantitativa dos neurônios submucosos evidenciados pela técnica de Giemsa podem ser observados na Tabela 1. Tabela 1. Resultados obtidos através da contagem do número de gânglio /50 campos microscópicos, número médio de neurônios em 50 gânglios e número total de neurônios em 50 campos microscópicos. GC GI N°. gânglios/50 campos 125.0 ± 14.9 126.8 ± 6.1 Média do n° neurônios/50 gânglios 12.5 ± 1.7 10.1± 1.8 N°. total de neurônio/50 campos 1.700,4 ± 57.4 1.444,8 ± 324.0 De acordo com os resultados obtidos, pode-se observar que não houve diferenças significativas em nenhuma das avaliações quantitativas realizadas (figuras 1). A cepa do parasito, a via de infecção, a imunidade e a genética do animal estudado exercem influência no desenvolvimento das alterações causadas pela doença.11 Não existem estudos prévios com neurônios do plexo submucoso em animais infectados pelo T. gondii. Nossos resultados diferem de outros estudos, onde a infecção pelo T.gondii levou a morte de neurônios mientéricos como no ceco de ratos infectados, e no duodeno de frangos12. As alterações nos neurônios mientéricos nos levam a crer que o parasito tem afinidade por células nervosa, levando estas à morte em função da proliferação do protozoário ou por via indireta pela ação da resposta imune13. Necessita-se de estudos complementares que nos possibilitem verificar como a população e as subpopulações de neurônios entéricos submucosos reagem a diferentes durações de infecção pelo T. gondii. Figura 1. Fotomicrografias obtidas com microscópio fotônico de neurônios submucosos do jejuno de ratos do GI (A) e do GC (B). 400x. Barra 50µm. Conclusão Conclui-se, portanto que a infecção induzida por oocistos de T. gondii (cepa ME-49, genótipo II) não alterou a densidade populacional de neurônios submucosos do jejuno de ratos. Referências 1. GUYTON, A. C. Tratado de Fisiologia Médica. 11ªed. Rio de Janeiro: Saunders Elseiver, 2006. 1115 p. 2. FURNESS, J. B. The enteric Nervous System. Massachussetts: Blackwell. 274 p. 2006. 3. GERSHON M. D. O segundo cérebro. Rio de Janeiro, p.270-271. 2000. 4. GWYNNE, R.M.; ELLIS, M.; SJOVALL, H.; BORNSTEIN, J. C. Cholera toxin induces sustained hyperexcitability in submucosal secretomotor neurons in guinea pig jejunum. Gastroenterology. v. 136, p. 299-308. 5. 2009. NEVES, D. P. Parasitologia Humana. 11ªed. São Paulo: Atheneu. 494p. 2005. 6. BUZONI-GATEL, D.; WERTS, C. Toxoplasma gondii and subversion of the immune. Trend in parasitology v. 22, n. 10, France. 2006. 7. FOCACCIA, R. Veronesi: Tratado de Infectologia. V.2. 3ªed. São Paulo: Atheneu, 2006. 8. VIVAS, L. A. 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Neurônios Mientéricos de Ratos Inoculados com T.gondii pela via oral também apresentam alterações quantitativas e morfométricas. 30f.Trabalho de Conclusão de Curso (Bacharelado em Enfermagem), UNIPAR, Umuarama, 2009.
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