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TÉCNICA PARA UTILIZAÇÃO DO BACTRAY I e II
(Bactérias Gram negativas oxidase negativa)
A) Método de incubação normal (18 a 24 horas)
A1) Suspender em água destilada ou deionizada estéril (pH 6,8
a 7,2) a bactéria a ser identificada, de maneira a se obter uma
turvação equivalente ao tubo 0,5 da escala Mac Farland.
Obs.: Inóculos com concentrações superiores podem induzir
resultados insatisfatórios, assim como o uso de solução salina.
Preferencialmente, utilize o crescimento de cultura recente
(18-24 horas de incubação).
A2) A suspensão acima deve ser bem homogênea, sendo
aconselhável o uso de um agitador mecânico.
Fig. 1
A3) Inocule 1,0 ml da suspensão bacteriana (A1) a cada
conjunto (Bactray I e II), após remover a tampa (fig. 1).
A4) Inclinando para trás (fig.2) o conjunto, num ângulo de aproximadamente 45°, incline para a
esquerda, após para a direita, repetindo esta operação duas vezes, sempre mantendo o mesmo
ângulo de inclinação (fig.3). Apoie o tray na mesa de trabalho e incline-o para frente de maneira
a obter uma perfeita distribuição do inóculo em todos os substratos (fig. 4).
Fig. 2
Fig. 3
Fig. 4
A5) Mantendo-o nesta posição, adicionar 3 gotas de óleo mineral estéril (ou mais se necessário)
às provas bioquímicas sublinhadas (ADH, LDC, ODC, H2S, URE) (fig. 5).
Obs.: É imprescindível que estes substratos estejam completamente vedados
Fig. 5
.
A6) Recoloque a tampa (de maneira a se obter uma perfeita vedação) e incube o tempo desejado
(neste caso, incubação normal de 18 a 24 horas). Recomenda-se incubar em câmara úmida para
evitar ressecamento.
A7) Após a incubação adicione 2 a 3 gotas dos reagentes necessários:
Alfa Naftol e KOH no VP. Observar após 15 a 20 minutos de reação.
Cloreto Férrico no PD. Aguardar 2 a 3 minutos para leitura da reação.
Reativo de Kovac's no IND. Observar a formação de anel dentro de 2 minutos.
Bactray
Instruções de uso
Página 01
B) Método enzimático (4 horas)
Proceder como no item A1 à A7 com exceção da turvação, que deve ser igual ao tubo 2 da
escala de Mac Farland, e da incubação de 4 horas ao invés de 24 horas. Neste caso, devemos
verificar a presença de algum sinal de reação positiva (turvação). Quando isto não ocorrer,
devemos reincubar por mais uma hora e adicionar os reagentes necessários. Caso os resultados
não sejam satisfatórios, realize o método normal (18 a 24 horas).
FUNDAMENTO DAS PROVAS REALIZADAS
TESTE
COMPONENTE
REATIVO
PRINCÍPIOS FÍSICO-QUÍMICOS
ONPG
A hidrólise da beta-galactosidase (o-nitrofenol-beta-d-galacto-piranoside) para
galactose na presença do o-nitrofenol desenvolve cor amarela
ONPG
ADH
Arginina dehidrolase transforma a arginina em citrulina e amônia. Isto ocasiona
uma elevação do pH do sistema com a conseqüente mudança do indicador de
amarelo para púrpura.
Arginina
LDC
Lisina descarboxilase transforma a lisina num composto básico de amina primária
(cadaverina) e Co2. Esta amina produz uma elevação do pH do sistema com a
conseqüente mudança do indicador de amarelo para púrpura.
Lisina
ODC
Ornitina descarboxilase transforma a ornitina num composto básico de amina
primária (putrescina) e Co2. Esta amina produz uma elevação do pH do sistema
com a conseqüente mudança do indicador de amarelo para púrpura.
Ornitina
H2S
O sulfeto de hidrogênio é produzido pela hidrólise enzimática do tiossulfato. Na
presença do citrato férrico forma um precipitado negro.
Tiossulfato
de sódio
URE
A urease hidrolisa enzimaticamente a uréia com produção de amônia e Co2.
Uréia
VP
Este é um teste para verificação da produção de acetoína, produto este
intermediário da degradação da glicose. Sua presença é indicada pela cor
vermelha ou rosa, formada pela reação do complexo hidróxido de potássio e alfa
naftol.
Glicose
PD
A desaminação da fenilalanina, produzida pelo ácido fenil pirúvico, forma uma cor
verde na presença de cloreto férrico.
L-fenilalanina
IND
A metabolização do triptofano pela triptofanase resulta na produção de indol
formando um complexo de cor rosa ou vermelho com o reagente de Kovac's.
Triptona
CIT
Consiste na utilização de citrato como única fonte de carbono, o qual quando
metabolizado, resulta num produto alcalino de coloração azul ou verde azulado.
Citrato
de sódio
MAL
Consiste na utilização de malonato como única fonte de carbono, o qual quando
metabolizado, resulta num produto alcalino de coloração azul ou verde azulado.
Malonato
Consiste na utilização de carboidratos com a concomitante produção de ácido,
mudando o indicador de azul para amarelo.
Rhamnose
Adonitol
Salicina
Arabinose
Inositol
Sorbitol
Sacarose
Manitol
Rafinose
RHA
ADO
ARA
SAL
INO
SOR
SAC
MAN
RAF
Bactray
Instruções de uso
Página 02
Interpretação das provas após incubação
É interessante que o bacteriologista possua sempre mais informações que as fornecidas pelas
reações bioquímicas (tais como origem e morfologia colonial), visando uma perfeita identificação
final. Estas alternativas não são usadas como dados básicos computáveis e sim, consideradas
como informações complementares para todas as identificações. Examine cuidadosamente
todas as reações, pois não são idênticas às dos outros sistemas. As reações do BACTRAY
devem ser definidas exatamente da maneira como se descrevem.
TESTE
POSITIVO
OBSERVAÇÕES
NEGATIVO
ONPG amarelo
inalterado
Qualquer tonalidade de amarelo é considerada reação positiva.
ADH púrpura
LDC
ODC
Amarelo,
marrom*,
cinza,
vermelho/vinho,
amarelo
esverdeado
1. Positivo forte = púrpura escuro
2. Positivo claro = púrpura claro
3. Negativo = amarelo
3.1. Não fermentação de dextrose:
a) Cinzento = característica de Acinetobacter sp
b) Vermelho-vinho-violeta = característica de Pseudomonas sp
*3.2. Fraca fermentação da dextrose :
Marrom avermelhado = característica de Serratia sp
3.3. Boa fermentação de dextrose:
Amarelo ou amarelo esverdeado = característica de E. coli
(fracamente negativo)
H2S
precipitado ausência de
negro
precipitado
Para obter uma boa leitura cobrir com óleo mineral estéril. Uma
coloração marrom desenvolvida no meio é considerada reação
negativa.
URE
vermelho
amarelo ou
laranja
Só reação de cor vermelha ou cereja é considerada positiva. Devese utilizar uma camada de óleo mineral estéril.
* VP
Vermelho
ou rosa
inalterado
Após 15 ou 20 minutos de reação. A observação de alguma
tonalidade de vermelho ou rosa é considerada positiva.
* adicionar: 2 a 3 gotas de alfa naftol e 2 a 3 gotas de KOH a 40%
* PD
verde
amarelo
Aguardar um ou dois minutos para leitura da reação. Tome cuidado
pois esta reação desaparece em poucos minutos
* adicionar 2 a 3 gotas de cloreto férrico
* IND anel rosa ou Anel amarelo
vermelho
A reação ocorre dentro de dois minutos após adicionado o
reagente. Fazer este teste por último
* 2 a 3 gotas do reativo de KOVAC'S
CIT
azul ou azul verde
esverdeado
Esta é uma reação aeróbia
MAL
Azul, verde Amarelo ou
escuro, azul verde claro
esverdeado
Organismos com crescimento lento podem demonstrar
positividade como azul esverdeado após 18 horas.
RHA Amarelo
ADO
SAL
ARA
INO
SOR
SAC
MAN
RAF
Verde ou azul
esverdeado
A reação deverá ser lida dentro de 24 horas pois incubação mais
longa pode provocar a alteração do meio para alcalino.
Bactray
Instruções de uso
Página 03
TÉCNICA PARA UTILIZAÇÃO DO BACTRAY III
(Bactérias Gram negativas oxidase positiva)
As recomendações para o uso do Bactray I e II são válidas para este, exceto a selagem das
provas bioquímicas (item A5) que estão sublinhadas, ou seja, controle dehidrolase (CTL), ARG e
URE, onde se coloca 3 gotas de óleo mineral para cada reação.
Após incubação (18 a 24 horas) verifique as reações ESC, CET e ARG. Se alguma delas for
positiva, adicione o reagente para indol no pocinho apropriado e determine o código. Caso
contrário, reincube por mais 24 horas. Após esta incubação, caso não haja crescimento, ou este
tenha sido escasso, deve-se repetir a prova fazendo novo inóculo, usando-se soro fisiológico
estéril (ao invés de água destilada). Este procedimento é realizado quando se suspeita de um
microorganismo exigente, por exemplo, algumas espécies do gênero Vibrio.
FUNDAMENTOS DAS PROVAS BIOQUÍMICAS
Cetrimide
Crescimento indica tolerância para cetrimide.
Acetamida
Malonato
Citrato
A utilização destas substâncias como única fonte metabólica de carbono, produz a
alcalinização do meio. Uma elevação do pH muda o indicador de verde para azul.
Maltose
A utilização de carboidratos resulta na produção de ácido, mudando o indicador (vermelho
de fenol) de vermelho para amarelo, ou amarelo-alaranjado.
Esculina
A hidrólise da esculina é detectada pelo citrato férrico amoniacal, formando um precipitado
negro.
L-Arginina
A arginina dehidrolase transforma a arginina em citrulina e amônia. Isto ocasiona uma
elevação do pH do sistema, mudando o indicador de amarelo para alaranjado ou
vermelho.
CTL
(Controle)
Esta prova serve de branco para leitura da arginina. Observe a coloração deste controle.
Caso a cor obtida na arginina seja de maior intensidade (vermelho, laranja ou rosa), esta é
considerada positiva.
Uréia
A hidrólise enzimática da uréia pela urease resulta na produção de amônia e Co2,
mudando o indicador para vermelho.
Indol
A desagregação (metabolização) do triptofano pela triptofanase resulta na produção de
indol, formando um complexo de cor rosa para vermelho com o reagente de Kovac's.
Bactray
Instruções de uso
Página 04
Interpretação das provas após incubação
TESTE
POSITIVO
COMENTÁRIOS
NEGATIVO
Cetrimide
Crescimento
Ausência de A turvação (crescimento) fornece positividade à prova
crescimento
Acetamida
Malonato
Citrato
Azul ou Azul
esverdeado
Verde
Alguma tonalidade de azul é considerada reação positiva
Maltose
Amarelo
Amarelo
alaranjado
Vermelho
alaranjado
Vermelho
Alguma tonalidade de alaranjado sugere a produção de ácido:
considera-se positivo
Esculina
Marrom Negro
Claro
A Pseudomonas aeruginosa pode formar uma pigmentação
marrom brilhante indicando a presunção duma reação
positiva. Esta pigmentação, usualmente, forma um efeito de
superfície fosca na área reativa que pode ser confundida
como reação positiva. O positivo verdadeiro é mais escuro e
difundido uniformemente, em toda a superfície
Amarelo
A interpretação da reação é baseada na coloração obtida no
controle. Vide quadro abaixo.
L-Arginina Vermelho Rosa
Dehidrolase ou alaranjado
Uréia
Vermelho Cereja Amarelo
Alaranjado
Qualquer tonalidade de vermelho observada é considerada
reação positiva.
Indol
Anel Rosa ou
Vermelho
Para uma reação positiva existe uma demora de 2 minutos.
Inalterado
CTL CONTROLE
ARG
RESULTADO
1) Amarelo
Amarelo
Negativo
2) Vermelho
Vermelho
Negativo
3) Laranja
Laranja
Negativo
4) Amarelo
Vermelho
Positivo
5) Laranja
Vermelho
Positivo
6) Amarelo
Rosa ou laranja
Positivo
Bactray
Instruções de uso
Página 05
CÁCULO MANUAL DOS CÓDIGO
1. BACTRAY I
ONPG
ADH
LDC
ODC
H2S
URE
VP
1
2
4
1
2
4
1
5
PD
2
4
IND
CIT
4
1
1
1
1a. Após a interpretação das provas assinale com um círculo as provas positivas. Estas tem o
valor numérico pré-estabelecido demonstrado acima. Executa-se as somas conforme sua
disposição, ou seja 3 a 3, com exceção da última (CIT) que vale 1 se positiva, zero se negativa.
1b. A soma anterior nos fornecerá um número de 4 algarismos.
1c. Este número é lançado no manual onde encontramos as probabilidades de identificação. No
exemplo acima citado (nº 5411), o manual identifica este microorganismo como sendo Klebsiella
pneumoniae.
2. BACTRAY I e II
Neste caso obteremos um número de 7 algarismos com maior precisão na identificação
BACTRAY I
ONPG
ADH
LDC
ODC
H2S
URE
VP
1
2
4
1
2
4
1
5
PD
2
4
IND
CIT
4
1
1
1
BACTRAY II
MAL
RHA
ADO
SAL
ARA
2
4
1
2
4
7
INO
1
7
SOR
SAC
2
4
MAN
RAF
1
7
2
3
Para obtenção deste número com 7 algarismos acopla-se os valores obtidos no conjunto I com o
II (figura acima), fazendo-se a união da prova do citrato (CIT) com as provas de malonato (MAL) e
rhamnose (RHA).
Segue-se como no item anterior 1c.
* No exemplo acima obtivemos um algarismo de 7 dígitos, o qual lançado no manual nos
fornecerá a identificação de Klebsiella pneumoniae.
BACTRAY II
CET
ACE
MAL
1
2
4
7
CIT
1
MLT
ESC
2
4
CTL
ARG
1
URE
2
IND
4
3
1
a) Circunde as provas positivas, some conforme as disposições das provas no desenho acima
(3 a 3).
b) O número obtido (máximo de 3 algarismos), lance no manual de microorganismos oxidase
positiva.
c) Código de acesso ao manual: 713. Identificação: Pseudomonas aeruginosa.
Bactray
Instruções de uso
Página 06
Provas bioquímicas dos microorganismos abrangidos
pelo sistema Bactray I e II - Percentual de positividade considerando:
ONP:ONPG
H2S:GÁS SULFÍDRICO
IND:INDOL
ADO:ADONITOL
SOR::SORBITOL
ADH:ARGININA DEHIDROLASE
URE:URÉIA
CIT:CITRATO DE SIMMONS
SAL:SALICINA
SAC:SACAROSE
Nome do organismo
ONPG ADH LDC ODC H2S
0
100 0
0
0
Pseudomonas luteola
0
14
7
0
0
Pseudomonas oryzihabitans
0
98
0
0
0
Acinetobacter baumannii
0
0
0
0
0
Acinetobacter lwoffii
0
0
0
0
0
Acinetobacter spp
0
95
0
0
0
Acinetobacter spp.
0
95
0
0
0
Acinetobacter spp
0
0
0
0
0
Acinetobacter spp
0
95
0
0
0
Acinetobacter spp
0
0
0
0
0
Acinetobacter spp
97
85
0
95
5
Citrobacter amaloniticus
99
80
0
99
0
Citrobacter diversus
89
67
0
0
78
Citrobacter freundii
90
50
0
95
0
Cedecea davisae
99
80
0
0
0
Cedecea lapagei
100 100 0
0
0
Cedecea neteri
100
0
98 98
0
Enterobacter aerogenes
99
97
0
96
0
Enterobacter cloacae
97
0
90 100 0
Enterobacter gergoviae
100
99
0
91
0
Enterobacter sakazakii
100
21
0
95
0
Enterobacter asburiae
100 100 0 100 0
Enterobacter cancerogenus
95
17 90 65
1
Escherichia coli
83
5
95 100 0
Escherichia fergusonii
98
0
6 100 0
Escherichia hermannii
100
30 85
0
0
Escherichia vulneris
85
0
0
0
0
Ewingella americana
0
0 100 100 100
Edwardsiella tarda
0
0 100 95
0
Edwardsiella hoshinae
90
6 100 98
0
Hafnia alvei
100
0
99
0
0
Klebsiella oxytoca
80
6
40
3
0
Klebsiella ozaenae
99
0
98
0
0
Klebsiella pneumoniae
0
0
0
0
0
Klebsiella rhinoschlero
100
0 100 100 0
Klebsiella ornithinolytica
100
0
97 100 0
Kluyvera ascorbata
100
0
23 100 0
Kluyvera cryocrescens
90
0
0
0
0
Moellerella wisconsensis
10
0
1
95 20
Morganella morganii
91
0
0
0
0
Pantoea dispersa
0
0
0
99 98
Proteus mirabilis
1
0
0
0
95
Proteus vulgaris
1
0
0
0
30
Proteus penneri
5
0
0
0
0
Providencia rettgeri
10
0
0
0
0
Providencia stuartii
1
0
0
1
0
Providencia alcalifaciens
Providencia rustigianii
0
0
0
0
0
Rahnella aquatilis
100
0
0
0
0
Salmonella choleraesuis
0
55 95 100 50
Salmonella paratyphi a
0
15
0
95
10
Salmonella typhi
0
3
98
0
97
Salmonella gallinarum
0
10 90
1 100
Salmonella grupo 3a
100
70 99 99
99
Serratia fonticola
100
0 100 97
0
Serratia liquefaciens
93
0
95 95
0
Serratia marcescens
95
0
99 99
0
Serratia odorifera 1
100
0 100 100
0
Serratia odorifera 2
100
0
94
0
0
Serratia plymuthica
70
0
0
0
0
Serratia ficaria
100
0
0
0
0
Serratia rubideae
100
0
55
0
0
Shigella boydii grupo c
8
18
0
2
0
Shigella dysenteride grupo a
0
2
0
0
0
Shigella flexneri grupo b
5
5
0
0
0
Shigella sonnei grupo d
97
2
0
98
0
Leclercia adecarboxylata
100
0
0
0
0
Stenotrophomonas maltophilia
95
2
76
2
0
Tatumela ptyseos
0
0
0
0
0
Yersinia enterocolitica
95
0
0
95
0
Yersinia frederiksenii
100
0
0
95
0
Yersinia intermedia
90
0
0 100
0
Yersinia kristensenni
70
0
0
92
0
Yersinia pestis
50
0
0
0
0
Yersinia pseudotubberculosis
70
0
0
0
0
Yokenella regensburgei
100
8 100 100
0
LDC:LISINA DESCARBOXILASE
VP:VOGES PROSKAUER
MAL:MALONATO
ARA:ARABINOSE
MAN:MANITOL
URE VP PD IND
26
0
0
0
77
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
85
0
0 100
75
0
0
99
44
0
0
33
0
50
0
0
0
80
0
0
0
50
0
0
2
98
0
0
65 100 0
70
99 100 0
0
0 100 50 11
60
2
0
0
0 100 0
0
1
0
0
98
0
0
0
98
0
0
0
99
0
0
0
0
0
95
0
0
0
0
0
99
0
0
0
50
4
85
0
0
90 95
1
99
10
0
0
0
95 98
0
0
0
0
0
0
100 70
0 100
0
0
0
92
0
0
0
90
0
0
0
0
95
0
95 95
0
64
9
0
98 50 98
2
95
0
99 98
100 0
99
0
98
0
98 99
30
0
95 98
0
0
98 99
0
0 100 98
0 100 95
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
1
13
9
0
0
3
93
0
1
15 98
0
1
5
50
0
60
0 100 0
50
0
80
0
0
0
75
0
0
2 100 0
0
0
0
0
25
0
0
0
45
0
0
0
50
0
0
0
0
48
0
0 100
0
2
0
0
0
5
90
0
75
2
0
50
70
0
0 100
80
5
0 100
77
0
0
30
5
0
0
0
95
0
0
0
0
0
0
0
CIT
100
97
100
0
0
0
0
0
0
0
95
99
78
95
99
100
95
91
99
99
100
100
1
17
1
0
95
1
0
10
95
30
98
0
100
96
80
80
0
100
65
15
0
95
93
98
15
94
25
0
0
0
9
91
90
98
100
97
75
100
95
0
0
0
0
0
80
2
0
15
5
0
0
0
92
MAL
0
0
98
0
0
95
87
0
0
0
1
95
11
91
99
100
95
65
96
18
3
100
0
35
0
85
0
0
100
50
98
3
93
95
100
96
86
0
1
9
2
0
0
0
0
0
0
100
0
0
0
0
95
88
2
3
0
0
0
0
94
0
0
0
0
93
50
0
0
0
5
0
0
0
0
RHA
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
99
99
100
0
0
0
99
92
99
100
5
100
80
92
97
93
23
0
0
97
100
55
99
96
100
100
100
0
0
91
1
5
0
70
0
0
0
94
100
100
0
10
99
76
15
0
95
94
0
35
1
1
30
5
75
100
0
0
1
99
100
0
1
70
100
ODC:ORNITINA DESCARBOXILASE.
PD:FENILALANINA DESAMINAÇÃO
RAM:RAMNOSE
INO:INOSITOL
RAF:RAFINOSE
ADO SAL ARA INO
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
30 99
0
99 15 99
0
0
0 100 0
0
99
0
0
0 100 0
0
0 100 0
0
98 100 100 95
25 75 100 15
0
99 99
0
0
99 100 75
0 100 100 0
0 100 100 0
5
40 99
1
98 85 98
0
0
40 100 0
0
30 100 0
0
80
0
0
0
0
9
0
0
50 13
0
0
13 95
0
99 100 98 98
97 97 98 55
90 99 99 95
100 98 100 95
100 100 100 95
0 100 100 0
0 100 100 0
100 0
0
0
0
0
0
0
0
0 100 0
0
0
0
0
0
50
0
0
0
0
0
0
100 50
0
90
5
2
1
95
98
1
1
1
0
0
0
0
0 100 100 0
0
0
0
0
0
0 100 0
0
0
2
0
0
0
80
0
0
0
99
0
100 100 100 30
5
97 98 60
40 95
0
75
50 98 100 100
55 45 100 100
0
94 100 50
0 100 100 55
99 99 100 20
0
0
94
0
0
0
45
0
0
0
60
0
0
0
95
0
93 100 100 0
0
25 22
0
0
55
0
0
0
20 98 30
0
92 100 20
0 100 100 15
0
15 77 15
0
70 100 0
0
25 50
0
0
8 100 0
Bactray
SOR SAC MAN RAF
0
0
95
0
0
0
95
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
99
9 100 5
99 40 99
0
100 89 100 44
0 100 100 10
0
0 100 0
99 100 100 0
91 100 100 96
95 97 100 97
0
98 100 97
0 100 100 99
100 100 100 70
0
0 100 0
94 50 98 50
0
0
98
0
0
45 100 40
1
8 100 99
0
0 100 0
0
0
0
0
0 100 100 0
0
10 99
2
99 100 99 100
65 20 100 90
99 99 99 99
100 75 100 90
100 100 100 100
40 98 100 98
45 81 95 100
0 100 60 100
0
0
0
0
0
1 100 0
0
15
0
1
0
97
0
1
0 100 0
1
1
15 100 5
1
50 10
7
1
15
2
1
0
35
0
0
94 100 100 94
90
0
98
1
95
0 100 0
99
0 100 0
1
0 100 10
99
1 100 1
100 21 100 100
95
98 100 85
99
99 99
2
100 100 100 100
100
0
97
7
85 100 100 94
100 100 100 70
1
99 100 100
43
0
97
0
30
0
0
0
29
1
95 40
2
1
99
3
0
66 100 66
0
93
0
0
0
98
0
11
99 95 98
5
100 100 100 30
100 100 100 45
100 100 100 0
50 97 97
0
0 100 100 15
0
0 100 25
Instruções de uso
Página 07
Provas bioquímicas dos microorganismos abrangidos
pelo sistema Bactray III - Percentual de positividade considerando:
CET :CETRIMIDE
MAL :MALONATO
MLT :MALTOSE
CTL :CONT. DESCARBOXILASE
URE :URÉIA
Nome do organismo
ACE
CIT
ESC
ADH
IND
:ACETAMIDA
:CITRATO
:ESCULINA
:L-ARGININA
:INDOL
CET
ACE
MAL
CIT
MLT
ESC
CTL
ARG
URE
IND
Agrobacterium radiobacter
0
0
0
0
95
95
*
0
95
0
Alcaligenes faecalis
27
95
60
95
0
0
*
0
0
0
Alcaligenes piechaudii
0
42
95
0
0
0
*
0
0
0
Alcaligenes xylosoxidans denitrificans
60
45
95
90
0
0
*
0
31
0
Alcaligenes xylosoxidans xylosoxidans
0
66
0
0
0
0
*
0
0
0
Bergeyella zoohelcum
0
0
0
2
0
0
*
0
95
95
Bordetella bronchiseptica
0
0
95
95
0
0
*
0
100
0
Brevundimonas diminuta
Brevundimonas vesicularis
Burkholderia cepacia
0
0
44
0
0
36
1
5
90
1
1
94
0
94
99
5
88
67
*
*
*
0
0
0
13
2
45
0
0
0
Burkholderia gladioli
3
0
0
93
0
0
*
2
30
0
Burkholderia pickettii VA1
1
0
0
99
100
0
*
6
100
0
Burkholderia pickettii VA2
0
0
0
100
0
0
*
0
100
0
Burkholderia pickettii VA3
0
0
0
100
100
0
*
3
81
0
Burkholderia pseudomallei
0
0
1
77
99
59
*
100
43
0
CDC grupo IVc-2
0
0
0
0
0
0
*
0
95
0
Chryseobacterium indologenes
0
0
0
12
95
95
*
0
0
95
Chryseobacterium meningosepticum
0
25
0
18
95
95
*
10
0
100
Comamonas acidovorans
4
95
25
94
0
0
*
0
0
0
Comamonas testosteroni
Empedobacter brevis
0
0
0
0
0
0
100
0
0
95
0
0
*
*
0
0
0
0
0
95
Flavobacterium odoratum
Methylobacterium
0
0
25
0
0
0
10
0
0
0
0
0
*
*
10
0
95
95
0
0
Moraxella lacunata
Moraxella osloensis
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
*
*
0
0
0
0
0
0
Ochrobactrum anthropi
0
0
0
0
50
40
*
36
95
0
Oligella urethralis
0
0
0
0
0
0
*
0
0
0
Pseudomonas aeroginosa
94
100
0
95
12
0
*
100
66
0
Pseudomonas alcaligenes
15
0
10
57
0
0
*
7
21
0
Pseudomonas fluorescens
Pseudomonas mendocina
Pseudomonas pseudoalcaligenes
89
75
56
6
0
0
10
1
10
93
100
26
2
0
0
0
0
0
*
*
*
97
100
36
21
50
3
0
0
0
Pseudomonas putida
81
0
10
94
31
0
*
100
13
0
Pseudomonas stutzeri
4
0
75
82
100
0
*
0
17
0
Shewanella putrefaciens
0
0
0
83
90
0
*
0
0
0
Sphingobacterium multivorum
0
0
0
30
95
95
*
0
92
0
Sphingomonas paucimobilis
0
0
10
0
95
95
*
8
0
0
Weeksella virosa
0
0
0
8
0
0
*
0
0
95
Chromobacterium violaceum
Pasteurella haemolytica
0
0
0
0
5
0
90
0
3
85
0
23
*
*
95
0
50
5
50
0
Pasteurella multocida
Pasteurella aerogenes
0
0
0
0
0
0
0
0
2
99
0
0
*
*
0
95
0
95
95
1
Aeromonas hydrophila
0
0
5
85
98
83
*
95
0
90
Plesiomonas shigelloides
0
0
0
5
55
0
*
90
0
95
Eikenella corrodens
Vibrio cholerae
Vibrio parahaemolyticus
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
95
5
0
95
95
0
0
0
*
*
*
0
5
5
0
0
55
0
95
95
Vibrio alginolyticus
0
0
0
5
95
0
*
5
0
55
Vibrio fluvialis
Vibrio hollisae
Vibrio metschnikovii
Vibrio mimicus
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
95
5
55
95
95
5
95
95
0
0
0
0
*
*
*
*
95
5
55
5
5
5
5
5
45
95
45
95
Vibrio vulnificus
0
0
0
55
95
0
*
5
5
95
Bactray
Instruções de uso
Página 08
Rua Cassemiro de Abreu, 521
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OCS 0009
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