1193 e 1247 - Departamento de Biotecnologia, Genética e Biologia

UNIVERSIDADE ESTADUAL DE MARINGÁ
CENTRO DE CIÊNCIAS BIOLÓGICAS
DEPARTAMENTO DE BIOLOGIA CELULAR E GENÉTICA
Roteiro de aula prática
DIFERENÇAS ENTRE CÉLULAS ANIMAIS E VEGETAIS
Prática - Observação da mucosa bucal.
Raspar a mucosa bucal com o auxílio de uma espátula de madeira. Com o material colhido
fazer um esfregaço fino e transparente sobre uma lâmina seca. Deixar a lâmina secar
movimentando-a no ar. Corar o material com azul de metileno ou orceína acética durante 5 minutos.
Cobrir com lamínula e observar ao microscópio com objetivas de 10x e 40x. Esquematizar o
material observado.
Prática - Observação da epiderme de pimentão (Capsicum annuum).
Faça um corte fino, pequeno e transparente na casca do pimentão. Deposite sobre a lâmina
e adicione uma gota de cloreto de zinco iodado. Cubra com lamínula (retirar excesso de corante
com papel filtro se necessário) e observe ao microscópio com objetivas de 10x e 40x. Na objetiva
de 40x fechar levemente o diafragma. Faça outro corte, corando-o com hidróxido de amônia.
Aguarde alguns segundos, cubra com lamínula (retirar excesso de corante com papel filtro se
necessário) e observe ao microscópio como anteriormente. Esquematize as observações.
ESTUDO DE CÉLULAS VEGETAIS
Prática - Células da epiderme inferior de Setcreasea purpurea.
Retirar um pedaço da epiderme inferior da folha de Setcreasea e colocar em uma lâmina
contendo uma gota de água destilada. Cobrir com lamínula. Retirar o excesso de água se necessário.
Observar ao microscópio com objetivas de 10x e 40x. Retirar a lâmina do microscópio e pingar uma
gota de cloreto de zinco iodado ao lado da lamínula. Sem retirar a lamínula e com o auxílio de papel
filtro, faça o cloreto de zinco substituir a água debaixo da lamínula. Aguarde alguns minutos e
observe novamente ao microscópio. Esquematize as observações.
Prática - Epiderme do catáfilo de Allium cepa (cebola)
Destacar um pedaço da epiderme do catáfilo da cebola e colocar em uma lâmina contendo
uma gota de cloreto de zinco iodado. Não deixar o catáfilo enrugado, esticando-o se necessário.
Cobrir com lamínula (retirar excesso de corante com papel filtro se necessário) e observar ao
microscópio com objetivas de 10x e 40x. Esquematize as observações.
Prática - Folha de Anacharis sp (Elódea)
Destacar um folíolo de Anacharis e colocar em uma lâmina contendo água. Cobrir com
lamínula e observar em objetiva de 10x e 40x. Esquematize as observações.
Relatório: Entregar ao final da aula.
Observar todas as lâminas nas objetivas de 4x, 10x e 40x. Desenhar com a objetiva de 40x,
identificando as estruturas celulares observadas.
UNIVERSIDADE ESTADUAL DE MARINGÁ
CENTRO DE CIÊNCIAS BIOLÓGICAS
DEPARTAMENTO DE BIOLOGIA CELULAR E GENÉTICA
Roteiro de aula prática
OBSERVAÇÃO DE ORGANISMOS PROCARIONTES:
Prática - Bactéria da coalhada (iogurte - Bacilo lacteo).
Sob uma lâmina coletar uma pequena porção de coalhada. Pingar uma gota de água e
dissolver bem. Fazer um esfregaço, tomando-se o cuidado de identificar o lado da lâmina no qual
encontra-se o esfregaço. Secar bem a lâmina, podendo utilizar chapa aquecida. Pingar 3-4 gotas da
mistura álcool-clorofórmio. Secar o preparado movimentando a lâmina no ar. Em seguida, pingar 2
gotas de azul de metileno, espalhando-o pela lâmina. Aguardar 5 minutos, lavando com água
destilada. Limpar o excesso de água e levar ao microscópio para observação em objetiva de 10x e
40x. Fechar um pouco o diafragma após a localização do material. Represente o material observado.
Prática - Bactérias do vinagre (Acetobacter aceti).
Sob uma lâmina coletar pequena porção da madre do vinagre azedado (película formada na
superfície) Faz-se um esfregaço, secando-o lentamente em chama ou placa aquecida. Pingar 2-3
gotas de azul de metileno, fazendo-o correr pela lâmina. Aguardar 10 minutos, e lavar a lâmina em
água corrente. Adicionar glicerina e cobrir com lamínula. Observar em objetiva de 10x e 40x.
Prática - Reconhecimento de bactéria e algas azuis.
Prepare as culturas A e B com antecedência de 3 a 4 dias. No frasco A coloque cerca de 10
grão de pimenta do reino e 100ml de água filtrada. Fechar o frasco, deixando-o em local pouco
iluminado. No frasco B coloque grama com raiz, bem picada, forrando o fundo do frasco.
Acrescente 100 ml de água filtrada. Deixar o frasco aberto em local areja do e iluminado.
Coloque uma gota de cada cultura, tomando-se o cuidado de não misturar os conta-gotas,
em lâminas (diferentes) limpas, cobrindo-as com lamínula. Observe ao microscópio em objetiva de
10x e 40x. Faça esquemas do que encontrar.
OBSERVAÇÃO DE ORGANISMOS EUCARIONTES:
Prática - Células de levedo.
Tome uma porção de fermento de pão, dissolvendo-o em água morna. Junte açúcar,
deixando descansar por 15 a 20 minutos. Pingue uma gota da suspensão sobre uma lâmina, cubra
com lamínula e observe ao microscópio. Em seguida, fixe o material passando a lâmina sobre uma
chama. Corar 5 minutos com violeta genciana. Lavar rapidamente em água corrente, cobrir com
lamínula e observar ao microscópio com as objetivas de 10x e 40x. Esquematize as observações.
Prática - Identificação de vários tipos de protistas.
Com antecedência de 6 a 7 dias prepare as culturas A e B. Coloque alface picada em uma
frasco (A) e grama picada em outro (B). Acrescente a ambos alguns grãos de arroz cru e 100 ml de
água filtrada. Deixe os frascos em local arejado e iluminado, sem exposição direta ao sol. Depois de
alguns dias cobrir os frascos com papel filtro ou algodão.
Coloque uma gota da cultura (A ou B - colha a película que se forma na superfície ou o
sedimento do fundo) em uma lâmina, cubra com lamínula e observe ao microscópio com objetivas
de 10x e 40x. Esquematize as observações.
Relatório: Entregar ao final da aula.
Observar todas as lâminas nas objetivas de 4x, 10x e 40x. Desenhar com a objetiva de 40x,
identificando as estruturas celulares observadas.
Célula Eucariótica: vários compartimentos (organelas)
Membrana plasmática:
CITOPLASMA:
Água
RNAs (mensageiro, transportadores)
Aminoácidos
Proteínas (livres, do citoesqueleto, etc)
Enzimas
Coenzimas
Vitaminas
NÚCLEO:
Sais minerais
DNA.
RNAs
Íons
Proteínas.
ATP
Enzimas.
Nucleotídeos
Íons. Água.
Ác. Graxo
Carboidratos
Glicogênio
Amido
(Polissacarídeos)
moléculas diversas (acetil Coa; piruvato, etc)
gorduras de reserva (gotas de triglicérides)
Ribossomos (RNA ribossomal + proteínas)
Etc.
fosfolipídios
glicolipídios
colesterol
proteínas
glicoproteínas
Membrana das
organelas:
fosfolipídios
glicolipídios
colesterol
proteínas
glicoproteínas
Lúmen das organelas:
Célula procariótica: um único compartimento
DNA. Proteínas, enzimas, RNAs, aminoácidos,
nucleotídeos, Água. Enzimas. Coenzimas.
Vitaminas. Sais minerais. Íons. ATP.
Nucleotídeos. Ác. Graxo. Carboidratos.
Polissacarídeos. moléculas diversas.
gorduras de reserva (gotas de triglicérides)
Ribossomos (RNA ribossomal + proteínas)
Etc.
Várias moléculas
diferentes, dependendo
da organela em questão.
Proteínas
Enzimas
Íons
Lipídios
Carboidratos
Água
Etc.
Membrana plasmática:
fosfolipídios
glicolipídios
proteínas
glicoproteínas
Roteiro de aula prática
IDENTIFICAÇÃO DE COMPONENTES QUÍMICOS CELULARES
•
Extração de DNA
Material:
cebola grande - 250 gramas
Sal de cozinha - 3gramas
Detergente neutro - 10ml
Álcool etílico 95% gelado
Papel filtro, tubos de ensaio, funil banho-maria a 60oC
Metodologia:
Picar a cebola em pedaços pequenos. Bater no liqüidificador e reservar 25g
Preparar 100ml da solução de extração: 3g de sal, 10ml de detergente. Completar com água
destilada até 100ml.
Junte a cebola com a solução de extração em um frasco e deixar em banho-maria a 60o C durante 15
minutos. Em seguida, resfrie colocando o recipiente em gelo.
Coe a mistura em papel filtro e recolha o filtrado em um tubo de ensaio.
Despeje, delicadamente, o etanol 95% no tubo de ensaio.
O DNA sobe para o etanol, no qual é insolúvel, ficando preservado e visível
Roteiro de aula prática
IDENTIFICAÇÃO DE COMPONENTES QUÍMICOS CELULARES
•
Carboidratos:
O amido é um polissacarídeo cuja unidade monossacarídica é a glicose. Apresenta-se sob
duas formas: amilose, que consiste de longas cadeias não ramificadas e que na presença de iodo,
dão coloração roxo-azulada, e amilopectina, que contém cadeias altamente ramificadas e dão
coloração marrom-avermelhada. Ambas estão presentes em proporções variáveis nos tecidos
vegetais de reserva.
01 - Teste de coloração do amido - Tuberculus tuberosae (batata inglesa)
Cortar, com a gilete, um pedaço muito fino e pequeno do interior da batata e colocar sobre
uma lâmina. Corar o material com Lugol por 5 minutos. Cobrir com lamínula. Observar.
02 - Euforbia splendens (coroa de Cristo)
Pingar sobre a lâmina uma gota de látex da coroa de Cristo dissolvido em água. Pingar
uma gota de Lugol. Cobrir com lamínula. Observar.
• Lipídios
Os lipídio se classificam em simples e compostos. Entre os compostos podem ser
diferenciados os lipídios figurados, que são visíveis em forma de gotas refringentes e os
mascarados, que são demonstrados por análises químicas.
03 - Citrus sp (laranja e limão)
Fazer um corte tangencial bem fino na casca da laranja ou limão de maneira que possa
passar a luz que nele incidir. Colocar sobre um vidro de relógio e pingar algumas gotas de Sudan IV
e corar por sete minutos. Retirar o corte com um pincel e colocá-lo sobre uma lâmina. Cobrir com
lamínula. Observar.
• Proteínas
Reação de biureto: o sulfato de cobre (CuSO 4) em meio alcalino reage com compostos
contendo duas ou mais ligações peptídicas, resultando um complexo de coloração violeta. A
intensidade da cor é proporcional ao número de ligações peptídicas existentes.
04 - Leite e clara de ovo
Pipetar 0,5ml de: 1)solução de clara de ovo diluída em água; 2)leite; 3)água e 4)gelatina.
Colocar em tubos de ensaios separados. Adicionar 05 gotas de CuSO4 a 1% e 05 gotas de NaOH
2,5N. Observar se ocorrem alterações de cores e explicar.
Reação Xantoproteica: o ácido nítrico (HNO3) reage com os anéis benzênicos dos
aminoácidos triptofano, tirosina e fenilalanina, formando nitro compostos amarelos em meio
alcalino. Realizar em conjunto com a prática 06.
05 - Leite e clara de ovo
Pipetar 0,5ml de: 1) solução de clara de ovo diluída em água; 2)leite; 3)água e 4)gelatina.
Colocar em tubos de ensaios separados. Adicionar 05 gotas de HNO3 concentrado e 05 gotas de
NaOH 20%. Observar se ocorrem alterações de cores e explicar. OBS.: Evitar respirar os odores
(gases) liberados pelo HNO 3. Manuseie-o com cuidado!! Realizar em conjunto com a prática 06.
• Identificação de pH
Para determinar o pH de soluções usamos indicadores e uma tabela de pH. Os valores da
escala (0-14) referem-se as proporções de H + e de OH- presentes na solução.
06 - Molhar as fitas de papel tornassol nas soluções químicas separadas e misturadas utilizadas nas
práticas anteriores (04 e 05). Observar a coloração das fitas e explicar.
Relatório: Entregar ao final da aula.
Observar todas as lâminas nas objetivas de 4x, 10x e 40x. Desenhar com a objetiva de 40x,
identificando as estruturas celulares observadas. Identificar os amiloplastos e a morfologia dos
grãos de amido. Identificar as bolsas de óleo ou depósitos de lipídios e verificar se a concentração
de lipídios é a mesma em todas a sua extensão.