Conservação in situ em Animais Domésticos
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Conservação in situ em Animais Domésticos
INCT: Informação SÉRIE TÉCNICA: Genético-Sanitária da GENÉTICA Pecuária“on Brasileira Publicado line’ em animal.unb.br em 20/09/2010 Publicado on-line em “www.animal.unb.br” em 21/11/2010 Conservação in situ em Animais Domésticos Concepta McManus 1 1,2 , Samuel Rezende Paiva 3 CNPq / INCT / Informação Genético Sanitária da Pecuária Brasileira, Universidade de Brasília (UnB) / Universidade Federal de Minas Gerais (UFMG), Belo Horizonte, MG. 2 3 Universidade Federal do Rio Grande do Sul (UFRGS), Porto Alegre, RS. Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia (CENARGEN), Brasília, DF. Conservação de recursos genéticos animais de fazenda: i) conservação de óvulos, embriões, sêmen ou células somáticas criogenicamente armazenados em nitrogênio líquido. ii) preservação da informação genética na forma de DNA, armazenada em amostras congeladas de sangue ou de tecido animal ou como segmentos de DNA. iii) conservação da população viva, ou seja, "in situ" de conservação. Conservação in situ: i) pode ser a única opção disponível em alguns casos. ii) Muito flexível na sua aplicação e permite o desenvolvimento e utilização de raças. iii) Devido a recursos limitados com as restrições orçamentárias, in situ de conservação pode ser restrita a uma pequena população. 1 iv) As propriedades genéticas de uma população pequena mudança rapidamente gerações avançadas causando dois problemas ou seja, perda de peculiaridades genéticas e uma redução na variabilidade genética. v) Assim, é imperativo usar um programa de conservação sustentável como in situ , que mantêm peculiaridades genéticas e da variabilidade genética de uma população. Peculiaridades genéticas de uma raça: • Geralmente não mudam se a população é mantida como uma raça pura; • Motivo de preocupação quando cruzamento é usado para restaurar a ordem na variabilidade genética; • Problema mais importante na análise "in situ" de conservação é como manter a variabilidade genética dentro da população, mantendo peculiaridades genéticas, sem reduzir as freqüências alélicas. 1. Deriva aleatório e redução da variabilidade genética Um filho herda um alelo de ambos os pais em cada locus. É ao acaso, que herda um alelo de um par de alelos de cada genitor. Ou seja, o número de filhos que herdam um alelo específico de um pai individual pode ser maior ou menor por acaso, mesmo que cada indivíduo tem um número constante de filhotes. Por exemplo, um alelo do par deixará de ser transmitido à próxima geração com a probabilidade de 0,25, se o indivíduo tem três filhos. A gama de probabilidade seria maior se a variação do número de filhos é levada em conta. Isso está levando em conta as transformações alelo ou freqüências genotípicas. O fenômeno que envolve mudanças nas freqüências alélicas por acaso, é chamado de "deriva aleatória". 2 A influência da deriva aleatória: • É pouco em uma grande população • Provoca uma redução drástica da variabilidade genética em uma população pequena • Por exemplo, se assumirmos uma população constituída por quatro animais e com dois tipos de alelos no mesmo número, a probabilidade que a próxima geração vai perder um tipo de alelo é de 1/128. Isto pode não ser considerada tão grave. No entanto, essa probabilidade atinge meia depois de apenas nove gerações. Além disso, considerando que existem muitos loci, podemos dizer com segurança que muitos tipos de alelos estão perdidos em uma pequena população, após algumas gerações. A redução da variabilidade genética faz com que os seguintes problemas: a) Aumento de locos homozigotos Com a diminuição da variabilidade genética, a proporção de locos em homozigose em um indivíduo torna-se maior. Isso significa que o aparecimento de genes homozigotos recessivos com efeitos indesejados, a perda de efeitos dominantes, e que resulta em depressão por endogamia que afeta a viabilidade, adaptabilidade e da procriação. Depressão por endogamia irá causar uma diminuição no tamanho da população e pode levar à extinção. b) Homogeneidade da população Com a diminuição da variabilidade genética, as propriedades genéticas dos indivíduos na população tornar-se mais homogênea causando uniformidade na população. Isso significa que a maioria dos indivíduos tendem a ser sensíveis ao mesmo tipo de doença ou o ambiente. Então, se eles se tornam homogêneas e são confrontados com a doença indesejáveis 3 ou ambiente, o risco de extermínio pode aumentar. A homogeneidade da população faz com que seja difícil mostrar respostas à seleção eficiente que é necessário para fazer a melhoria genética da população viável. c) A perda de genes úteis Animais silvestres ou raças locais provavelmente tem muitos alelos úteis que são raras em outras raças, embora muitas delas não são reconhecidas. A redução da variabilidade genética aumenta a probabilidade de que eles podem ser perdidos. 2. Avaliação da diversidade genética O primeiro passo para a manutenção da diversidade genética é avaliar e estabelecer o nível de diversidade genética na população em questão. Discussão das seções seguintes, portanto, incidir sobre os métodos para avaliar a diversidade genética de uma população ideal, alguns procedimentos populares em genética de populações e alguns métodos simples e práticos para a avaliação da diversidade genética. a) A diversidade genética ou heterozigosidade média A diversidade genética ou heterozigosidade média é o melhor índice da variabilidade genética de uma população (Nei, 1987). Em uma população de acasalamento ao acaso, se uma freqüência do alelo i de um locus é xi, a heterozigosidade (h) deste locus é calculada pela soma dos quadrados das freqüências, em todos os alelos, como mostrado na seguinte equação: h = 1 - Σxi2. (1) A heterozigosidade média de uma população é definida como a média de heterozigosidade de todos os loci. Como não podemos saber o genótipo 4 de cada lócus em todos os indivíduos, este método é considerado como o conceito ou o valor ideal da diversidade genética de ser estimado. Sem o conhecimento dos genótipos de cada indivíduo, a melhor maneira de manter a diversidade genética pode ser mantendo os alelos provenientes de alelos diferentes na primeira geração do maior número possível. Os métodos para avaliar a possibilidade de que um par de alelos é idêntico por descendência são discutidos nas seções subseqüentes. b) O tamanho efetivo populacional A fim de ilustrar a deriva aleatória, a população foi idealizada proposta (Falconer e Mackay, 1996). • Há uma grande base populacional sob acasalamento ao acaso e um grande número de subpopulação subdivididos da população base. • As subpopulações são referidas como linhas. • A população base tem tamanho infinito e cada linha tem tamanho N. A população idealizada assume-se como segue: (1) acasalamento é restrito dentro da subpopulação sem migração, (2) não geração de sobreposição (3) o número de indivíduos reprodutores em cada linha é a mesma para todas as linhas e em todas as gerações (4) O acasalamento é aleatório dentro de cada linha, incluindo a autofertilização (5) nenhuma seleção (6) nenhuma mutação. Com base nos pressupostos da população idealizada, a teoria básica da genética populacional foi desenvolvida. A população animal real que não pode satisfazer as condições acima. Portanto, temos que converter o tamanho da população para o tamanho da população idealizada mostrando um grau equivalente de deriva aleatória. Este é o número efetivo de 5 indivíduos reprodutores, ou o tamanho efetivo da população, Ne. O tamanho efetivo da população pode ser derivado a partir do número real como se segue. • Com a autofertilização excluída: Ne = N + 1 / 2. • (aprox.) (2) Com o acasalamento de irmãos igualmente excluídos: Ne = N + 2. • (aprox.) (3) Com um número diferente de machos e fêmeas, N = Nm + Nf, onde Nm e Nf é o número de machos e fêmeas, respectivamente: 1 / Ne =1 / 4Nm +1 / 4Nf. • (aprox.) (4) Com números desiguais em gerações sucessivas: 1/ Ne = (1 / N1 +1 / N2 +...+1 / Nt) / t. • (aprox.) (5) Com a distribuição aleatória não do tamanho da família (Wright, 1938): Ne = (4N - 2) / (Vk +2) (aprox.) (6) Onde, Vk é a variância do tamanho da família. • Com variação diferente do tamanho da família por sexo (Hill, 1972): 1 / Ne = [2 + Vkmm + 2 (Nm/Nf) Cov(kmm, kmf) + (Nm/Nf)2 Vkmf] / 16Nm+ [2 + Vkff + 2 (Nm/Nf) Cov(kfm, kff) + (Nf/Nm)2 Vkfm] / 16Nf (7) Onde: • Vksm e Vksf são as respectivas variâncias dos descendentes do sexo masculino e feminino contribuiu por um dos pais do sexo s. • Cov (ksm, ksf) são as covariâncias do número de descendentes do sexo masculino e feminino, respectivamente, contribuíram por um dos pais do sexo s. 6 • O maior número de tamanho da população facilita a manutenção da diversidade genética na população de um menor. Os efeitos da pratica da seleção continua, conjugada a subdivisão populacional, podem resultar em um aumento da probabilidade de acasalamento de indivíduos aparentados, com efeitos indesejáveis sobre os índices produtivos e, principalmente, sobre os índices reprodutivos dos rebanhos. As estimativas do tamanho efetivo médio da população indicam o limite superior, inferior e “real” do Ne em populações em que as informações genealógicas são escassas (Gutierrez e Goyache, 2005). • Ne mínimo de 40 animais por geração e sugerido por Goddard e Smith (1990), para maximizar o retorno econômico. • Meuwissen e Woolliams (1994) recomendaram valores entre 31 e 250 animais para prevenir decréscimos no valor adaptativo da população. • Frankham (1995) sugeriu um tamanho efetivo da ordem de 500 animais para manutenção do potencial evolutivo indefinidamente. Contudo, este autor frisou que, para a prevenção de depressão endogamia, um tamanho efetivo de 50 animais e suficiente. Esse mesmo tamanho efetivo e recomendado pela FAO (1998), para populações sob conservação. c) O coeficiente de endogamia (F) O coeficiente de endogamia: Probabilidade de que os dois genes em qualquer lugar em um indivíduo são idênticos por descendência, sob a condição de que os dois genes dos pais são aleatoriamente transferidos à progênie com a probabilidade de um meio. 7 Não é a verdadeira probabilidade de homozigose, porque a probabilidade é tendenciosa devido à seleção, a probabilidade se refere apenas a uma geração diferente, a probabilidade de homozigose sem idênticos por descendência, ou seja, idênticas no estado não é considerado a possibilidade de mutação é negligenciada. É também uma boa medida de homozigose. A taxa de endogamia (∆F) em uma população idealizada: ∆F = 1 / 2N. (8) O coeficiente de endogamia esperado de indivíduos na tª geração é, portanto, Ft = ∆F + (1 - ∆F) Ft-1 = 1 - (1 - ∆F)t. (9) A fórmula geral do coeficiente de endogamia de um indivíduo com pedigree é: Fx = Σ(1/2)n (1 +FA) (10) Onde: • n é o número de indivíduos em todo o trajeto de relacionamento contando os pais de X, o ancestral comum; • todos os indivíduos no caminho de ligação aos pais ancestral comum, é o somatório de todos os caminhos do relacionamento; • FA é o coeficiente de endogamia de uma ancestral comum (Falconer e Mackay, 1996). 8 F: • Também um importante indicador de depressão por endogamia. • Portanto, impedir o aumento do nível de endogamia através do coeficiente in situ de conservação é aspecto importante na manutenção da diversidade genética. • Pode ser calculada pelo método de coancestria, conforme descrito abaixo. d) Coancestria f A coancestria de dois indivíduos: • Probabilidade de dois gametas tomados ao acaso, um de cada, realizar alelos idênticos por descendência. • Valor é idêntico ao coeficiente de endogamia de sua prole. • Considere X individual, seus pais P e Q, e avós A, B, C e D. A coancestria f está sob as seguintes regras: fPQ = (fAC + fAD + fBC + fBD) / 4 FX = fPQ (11) (12) fPC = (fAC + fAD) / 2 (13) fXX = (1 + FX) / 2 (14) • Indica que o coeficiente de endogamia da geração seguinte. • Alta correlação com a diversidade genética. • Bom índice para medir a diversidade genética utilizando in situ de conservação (Furukawa et al., 1996). 9 e) O coeficiente de relação (R) • Mostra a correlação dos valores genéticos entre dois indivíduos; • R de parentes em uma população de acasalamento ao acaso é de cerca de duas vezes a sua coancestria. R = 2fPQ / [(1 + FP) (1 + FQ)]1/2. (15) f) O índice de conservação genética • Objetivo de um programa de conservação é de reter toda a gama de alelos possuída pela população base; • O animal ideal seria receber contribuição igual de todos os antepassados fundador da população; • O valor de um animal pode ser determinado pelo cálculo do número efetivo de fundadores, na sua genealogia utilizando o índice de conservação genética seguinte, GCI (Alderson, 1992). GCI = 1 / ΣPi2 (16) Onde: Pi é a proporção de genes do animal fundador i no pedigree. • Pode ser usada tanto por criadores individuais como um auxílio para a seleção de um touro do rebanho, ou dentro de uma política global de raça para formular um programa de criação do grupo. • O índice apresenta limitações como não representando qualquer concentração de criação de animais não-fundador em gerações 10 subseqüentes em um pedigree e é inaplicável sem registro genealógico (Alderson, 1992). g) O coeficiente de variação genética contributivo Pi na fórmula (16) é o contribuinte genético do animal fundador i nas gerações subseqüentes. Uma idéia semelhante de GCI foi aplicado em nível da população. Essa é a manutenção das populações subsequentes, mantendo a estrutura genética da população base. Na estrutura genética ideal, cada animal fundador iria manter a mesma contribuição para as populações subseqüentes. Para indicar a tendência genética entre um contribuinte e um real de contribuição genética ideal, o coeficiente de variação genética contributivo, CGCV foi proposto por Abe e Furukawa (1982, mimeo). CGCV = 2Nm ΣPmi2 + 2Nf SPfj2 - 1 (17) Onde: Nm e Nf é o número dos fundadores em masculino e feminino, Pmi e Pfj são os contribuintes do fundador da genética masculina i e feminino fundador j, respectivamente. CGCV apresenta alta correlação com a diversidade genética nas gerações verdade inicial, no entanto, a correlação torna-se mais baixos nas gerações posteriores (Furukawa et al., 1996). Os métodos de avaliação da diversidade genética discutidas acima têm características diferentes. A diversidade genética de todos os loci não pode ser estimada, na verdade, mas se os marcadores de DNA são muitas genotipados a heterozigosidade média poderia ser utilizada como índice de diversidade genética. O tamanho efetivo da população, o coeficiente de endogamia, a coancestria e o coeficiente de relação tem sido popular em genética de populações. O tamanho efetivo da população é útil para comparar as 11 estruturas dos diferentes grupos populacionais. O coeficiente de endogamia indica o grau de fixação gênica. A coancestria inclui ambos os parâmetros de endogamia e de relacionamento, de modo que o coeficiente de relação é menos útil. GCI e CGCV são úteis na prática, porque eles são fáceis de calcular, em uma população pedigree. No entanto, a sua aplicação para avaliação da diversidade genética é limitada às gerações iniciais. 3. A manutenção da diversidade genética A fim de manter a diversidade genética em uma população, o efeito da deriva aleatória deve ser reprimida e que a probabilidade de fixação do gene deve ser minimizada. Para este objetivo, o método mais simples é não permitir a substituição de gerações. A metodologia será descrita no documento relativo ex situ de conservação. O efeito da deriva aleatória e a probabilidade de fixação do gene são mais baixos em uma população maior, mas o número de animais utilizados para "in situ" de conservação é limitada. Aqui alguns procedimentos para manter a diversidade genética de uma população de tamanho infinito são discutidos. a) O acasalamento para evitar a endogamia Acasalamento entre parentes, como o acasalamento de irmãos produz progênies acasalamento para com alto coeficiente evitar parentes pode de endogamia. Portanto suprimir um aumento do coeficiente de endogamia e pode impedir os efeitos prejudiciais da endogamia. O tamanho efetivo da população para evitar o acasalamento de irmãos: Ne = N + 2. 12 Se o tamanho da população não é grande: Ne = N + 1 (18) Deve ser aproximada (Wang, 1995). Entretanto, como é entendida a partir da fórmula (18), no caso de que o tamanho da população é grande o suficiente, o acasalamento para evitar os parentes não afeta o tamanho efetivo da população. Para suprimir o aumento no coeficiente de endogamia em uma população "esquiva máximo de endogamia" acasalamento foi proposta por Wright (1921), onde a maioria dos acasalamentos entre indivíduos não aparentados são sistematicamente realizados em cada geração. A taxa de endogamia no acasalamento com o máximo de evitar a consangüinidade é previsto aproximadamente da seguinte forma: ∆F = 1 / 4N. (19) Esta é uma metade da taxa de endogamia com acasalamento aleatório. No entanto, torna-se difícil manter ∆F pequenos nas gerações posteriores. Mais tarde, Crow e Kimura (1963) mostrou que houve alguns sistemas de acasalamento que podem reduzir o coeficiente de endogamia nas gerações posteriores. No entanto, estes métodos produzem maior coeficiente de endogamia em gerações iniciais de acasalamento com a evasão máxima de endogamia. O acoplamento circular é um exemplo delas. A taxa de endogamia em uma grande população sob acasalamento circular é aproximada da seguinte forma: ∆F = Π2 / 4 (Ne + 2)2. 13 (20) b) Acasalamento em grupo • No in situ programa de conservação, uma vez que o número de animais mantidos em um local normalmente é limitado, a população é mantida por vezes com subpopulações dividido. • Neste caso, é difícil realizar cruzamentos aleatórios sobre todas as subpopulações, e é eficaz para a mudança do sexo masculino entre as subpopulações, em vez de acasalamento ao acaso, em geral (Yamada, 1980). • Manutenção dos animais em locais diferentes tem o mérito adicional de reduzir o risco de perda acidental da população (Nomura e Yonezawa, 1996). Um exemplo de um esquema de cruzamento do grupo com base no acasalamento subpopulação circular foi proposta por Crow e Kimura (1963). Sob este sistema de acasalamento, as subpopulações são localizados e reprodutiva os machos circular em subpopulações são fornecidos sistematicamente a partir do subpopulações vizinhas. A taxa de endogamia na população em geral com um grande número de subpopulações é aproximada da seguinte forma: ∆F = Π2 / 16 (k/ 2 + Ne + 1)2 (21) Onde k é um número de subpopulações e Ne é o tamanho efetivo da população da subpopulação. • Robertson (1964) generalizou que o acoplamento conjunto de parentes próximos da população leva a uma maior iniciais de endogamia, mas uma menor taxa final de aproximação ao limite. • Nomura e Yonezawa (1996), teoricamente, comparou algumas grupo de sistemas de acoplamento circular, onde o sistema cíclico 14 pode restringir a taxa de endogamia em gerações iniciais mais do que a subpopulação de acoplamento circular. c) a uniformidade do tamanho da família Uma das técnicas mais eficientes para manter a variabilidade genética é fazer com que o tamanho da família tão iguais quanto possível. Pode ser fácil imaginar que a probabilidade de extinção de um alelo certo é menor no caso em que cada animal produz duas progênies de reprodução para a próxima geração do que no outro caso que uma reprodução animal produzir dez progênies e os outros não produzir. Esta situação é normal em uma população de animais domésticos que tem muitos menos machos do que as fêmeas, mas a diferença no número de machos e fêmeas não é desejável para a pequena população de recursos genéticos, uma vez que significa a diferença extrema no número de progênies. Quando o número da população é fixo, podemos minimizar a redução da diversidade genética para a equalização do número de descendentes de cada indivíduo. • O efeito da uniformização do tamanho da família pode ser previsto a partir da fórmula (6). • Se os indivíduos são escolhidos igualmente de todas as famílias, não há variação no tamanho da família, eVk= 0. • Então, o tamanho efetivo da população é: Ne = 2N - 1 (22) Que é aproximadamente o dobro do tamanho de uma população da raça igual número de machos e fêmeas. 15 • Se os números não são iguais em ambos os sexos, a variação do tamanho da família dentro de sexo, tal como definido na fórmula (7) pode ser reduzido à zero, escolhendo um macho de progênie de pai e cada uma fêmea de cada barragem descendência como pais para a próxima geração. • A taxa de endogamia, é dado pela seguinte fórmula (Gowe et al., 1959): 1 / Ne = 3 / 32Nm + 1 / 32Nf (23) O efeito de uniformizar simultaneamente do tamanho da família e a evasão máxima de endogamia foi investigada por Robison e Bray (1965). Se ambos os procedimentos são realizados simultaneamente, o coeficiente de endogamia, nas gerações iniciais permanece baixo, mas a população com tamanho da família uniformizadora pudesse manter baixo coeficiente de endogamia, finalmente. Outras informações sobre populações de conservação a) As estatísticas F de Wright (1938) - Fit, Fst e Fis • para medir a variação existente entre e dentro de populações: a. Fit é o coeficiente médio de endogamia da população; índice de fixação ou coeficiente de endogamia nos indivíduos do conjunto populacional (endogamia global); b. Fst índice de fixação ou coeficiente de endogamia entre populações (devido à subdivisão) e designa o coeficiente médio de endogamia esperado, estimado em populações hipotéticas produzidas pelo acasalamento ao acaso dos pais, dentro de cada período; 16 c. Fis índice de fixação ou coeficiente de endogamia intra- populacional (endogamia a nível populacional) e expressa o desvio da Se Fis for casualidade maior do obtida que nos zero, acasalamentos então a atuais. endogamia real ultrapassa o nível esperado sob acasalamentos ao acaso, e isto implica que os acasalamentos estão acontecendo entre animais mais aparentados do que a média e, conseqüentemente, a população estará dividida em subpopulações. Quando Fis é menor do que zero, ou a endogamia é evitada ou predomina o acasalamento entre subpopulações. * O FST quantifica o grau de divergência entre populações. Freqüências alélicas iguais em todas as populações irão causar FST = 0. Já para FIT e FIS, valores negativos ou próximos de zero indicam que ha variabilidade genética na população devido à presença de maior numero de animais heterozigotos, enquanto que valores distantes de zero indicam maiores níveis de homozigose na população. De acordo com Caballero & Toro (2000, 2002) a distancia entre raças ou populações pode ser calculado usando Matriz de Distancia mínimo de Nei (Dm) Dm =((fii + fjj)/2)-fij Onde fii e fjj são a coancestria media entre duas raças ou subpopulações (i e j) e fij a coancestria entre duas raças ou subpopulações (i e j). b) Numero efetivo de fundadores (f e) • Representa o numero de animais com igual contribuição, que produziria a mesma variabilidade genética população estudada (Gutierrez e Goyache, 2005). 17 encontrada na • A contribuição genética é maior à medida se produzem mais descendentes. • Quando cada um dos fundadores apresenta a mesma contribuição esperada, o fe passa a ser igual ao numero real de fundadores. • Em qualquer outra situação, o fe e menor que numero real de fundadores. • O equilíbrio esperado das contribuições dos fundadores e atingido quanto maior for o numero efetivo de fundadores. • Teoricamente, quanto maior o fe, maior será a variabilidade genética da população. c) Numero efetivo de ancestrais (f a) • Representa o numero mínimo de animais (fundadores ou não) necessário para se explicar a total diversidade genética da população estudada (Gutierrez e Goyache, 2005). • complementa a informação oferecida por fe por considerar perdas de variabilidade genética produzidas pelo uso desbalanceado de indivíduos para reprodução, gerando o “efeito gargalo”. • Denomina-se efeito gargalo (bottleneck) a redução drástica no numero de indivíduos de uma geração para outra, mesmo que, posteriormente, o tamanho original da população seja restabelecido. • Segundo Nei et al. (1975), alelos presentes em baixa freqüência antes do gargalo podem ser perdidos. • Quanto maior a distancia entre fa e fe, menor e a participação de todos os animais fundadores na população ao longo das gerações. 18 • O ideal e que o numero efetivo de animais fundadores seja igual ao numero efetivo de animais ancestrais, ou que a diferença entre eles seja sempre a menor possível. d) Equivalente de fundador genoma (Ballou & Lacy 1995) a. Numero de fundadores esperados, teoricamente, necessários para causar a diversidade genética na população atual se os fundadores foram representados igualmente e não houve perda de alelos; b. Obtido como inverso de duas vezes a media coancestria de indivíduos na população (Caballero & Toro 2000). e) Coeficiente Médio de Parentesco (AR) • definido como a probabilidade de um alelo, escolhido aleatoriamente entre uma população inteira, pertencer a um dado animal no pedigree. Para medir a variabilidade genética e conhecer as conseqüências da política de acasalamentos utilizadas em uma população, uma das informações mais significantes procede das analises da contribuição genética, atribuídas pelo coeficiente médio de parentesco, de fundadores e ancestrais (Navarro, 2008). AR • De um animal fundador indica sua contribuição genética para a população. • Pode ser utilizado como uma alternativa ou complemento ao coeficiente de endogamia (F) para prever a endogamia de uma população a longo prazo; 19 • Leva em consideração a porcentagem do pedigree completo originado de um fundador (Gutierrez e Goyache, 2005); • Pode ser utilizado como uma medida da endogamia entre subpopulações; • Servir de ferramenta para a gestão de populações através do uso de animais com menores níveis de AR na reprodução; • Em se tratando de uma ferramenta, seu uso deve ser associado aos demais parâmetros como endogamia, numero efetivo de fundadores e intervalo de gerações. f) Integridade dos Pedigrees: • Utilizada para avaliar a quantidade de descendentes presentes em cada geração de determinado individuo, proporcionando porcentagens de pais, avos, bisavós, etc., em uma representação gráfica das gerações mais recentes, distinguindo as vias paternas e maternas (MacCleur et al., 1983). • Para cada individuo pode calcular: o O numero de gerações totalmente determinadas: definido como aqueles que separam a prole da geração mais distante onde os ancestrais 2g do individuo são conhecidos. Os ancestrais sem pais conhecidos são considerados como fundadores (geração 0). o O numero Maximo de gerações determinadas: determina o numero de gerações que separam o individuo de seu antecessor mais distante. o Equações completas equivalentes para cada animal no pedigree: computadas como a soma sobre todos os 20 ancestrais conhecidos dos termos calculados como a soma de (½)n onde n e o numero de gerações que separam o individuo de cada ancestral conhecido (Maignel et al., 1996, Boichard et al. 1997). g) Intervalo de Gerações (IG) a) idade media dos genitores no nascimento da progênie mantida para reprodução (James, 1977); b) idade media dos pais ao nascimento dos filhos (utilizados ou não para reprodução); • são calculados pelos quatros passagens gaméticas (pai-filho, paifilha, mãe-filho e mãe-filha). • na analise da estrutura genética de populações é essencial uma vez que perdas da variabilidade venham acontecer de geração em geração. o se o intervalo de geração e curto, as perdas de variabilidade genética se processam numa velocidade maior por unidade de tempo. o em programa de melhoramento genético animal, quanto maior o intervalo de gerações, menor será o ganho genético anual na população selecionada. h) Taxa de migração (m) a. Razão entre numero de animais das populações parentais que atuam como pais sobre o numero total de pais (da população parental ou não) identificado na população de referência. 21 A utilização de informações de marcadores genéticos O grau de endogamia é estimado a partir de informações de pedigree com base na probabilidade de que os alelos dos pais são transmitidas à geração seguinte, com a probabilidade de uma meia, uma vez que não podemos saber qual dos dois tem sido transmitida. Desenvolvimentos recentes na análise do genoma fornecer mapas de ligação de um lote de marcadores genéticos como microssatélites para muitas espécies animais. Quando os genótipos dos pais e seus descendentes são distintos, podemos saber quais alelos dos pais tem sido transmitida para a progênie. Ao utilizar essas informações combinadas com as informações de pedigree, podemos estimar o grau de endogamia nas progênies mais exatamente (Takeda et al., 1997). A correlação entre a heterozigosidade média de marcadores genéticos e diversidade genética realizada deverá ser constante ao longo de gerações. Se pudermos utilizar uma grande quantidade de marcadores genéticos para calcular a heterozigosidade média é útil como o índice de diversidade genética. E essa informação poderia ajudar a selecionar os pares de acoplamento adequado para manter a diversidade genética na população (Takeda et al., 1998). A fim de manter a diversidade genética utilizando in situ programa de conservação, é melhor manter um grande número de animais. No entanto, a manutenção de um grande número de animais é caro, em vista disso, a manutenção de um número menor relativamente ao abrigo de um bem gerido "in situ" do programa de conservação seria economicamente mais eficientes. A maneira mais eficaz de conservar os recursos genéticos é através da utilização econômica dos animais no sistema de produção. No entanto, raças melhoradas de países ocidentais tendem a superar as raças autóctones dos países em desenvolvimento em termos de produtividade, isto faz promoção de utilização de raças puras 22 nativas difícil. Este problema pode ser superado pelo cruzamento de raças nativas com raças melhoradas, como mostrado pela Furukawa et al. (1998). "In situ" de conservação é a maneira mais fácil do ponto de vista metodológico e pode ser aplicado a qualquer espécie de gado. Por outro lado, ex situ de preservação é uma técnica que permite manter a diversidade genética da população de forma permanente. No entanto, ex situ de germoplasma de preservação pode ser adaptada e utilizada para completar in situ programa de conservação de recursos genéticos animais. Criopreservação de homens na população de base podem ajudar a recuperação da diversidade genética dos recursos genéticos animais. Portanto, em conclusão, é sugerido que a combinação eficiente de in situ e ex situ de programas de conservação devem ser consideradas. Literatura Alderson, L. 1992. A system to maximize the maintenance of genetic variability in small populations. In Genetic Conservation of Domestic Livestock II, Eds. Alderson, L. and Bodo, I., CABI, Wallingford, U.K., pp. 18-29. Beretta, V., Zanon, A., Soffiantini, C.S., Sabbioni, A. (2005) Preliminary results about morphological and demographic traits of Romagnolo donkey. Ann. Fac. Med. Vet. di Parma, 25:131-144. Bijma P., van Arendonk J.A.M. and Woolliams J.A. 2001. Predicting rate of inbreeding for livestock improvement schemes. Journal of Animal Science 79, 840–853. Boichard, D. (2002) PEDIG: a Fortran package for pedigree analysis suited for large populations. In: Proceedings of the 7th World Congress on Genet. Appl.Livest. Prod.. Montpellier (France) 19-23 August 2002, Comm. No. 20-13. Boichard, D.; Maignel, L.; Verrier, E. et al. The value of using probabilities of gene origin to measure genetic variability in a population. Genetic Selection Evolution, n.29, p.5-23, 1997. Caballero, A.; Hill, W.G. Effective size of nonrandom mating populations. Genetics. 130:909, 1992. Charkraborty, R.; Danker-Hopfe, H. Analisys of population structure: a comparative study of different estimators of Wright’s fixation indices. Handbook of statistics, 1991. Crow, J.F.; Kimura, M. An introduction to population genetics theory. Minneapolis: Alpha Editions. 591p. 1970. Falconer, D.S. and Mackay, T. F. C. 1996. Introduction to Quantitative Genetics. 4th ed., Longman, Essex, U.K. 23 Falconer, D.S. Introduction to quantitative genetics. 3.ed. New York: Logman Scientific & Technical. 438p. 1989. 48 FAO 1998. Secondary guidelines for development of national farm animal genetic resources management plans Management of small populations at site. Rome FAO, 215p. 1998.http://lprdad.fao.org/cgibin/getblob.cgi?sid5-1,50006090 Frankham, R. Conservation genetics. Annual Review of Genetics, v.29, p.305-327, 1995. Furukawa, T., Nirasawa, K., Satoh, M., Ishii, K. and Hicks, C. 1998. Sustainable production systems for use and conservation of native pig breeds in developing countries. In Proc. 4th Global Conf. on Conservation of Domestic Animal Genetic Resources. Eds. Hansen, C., Sherchand, L. and Shrestha, J. N. B. (In press). Furukawa, T., Takeda, H., Nirasawa, K., Takahashi, H., Nagamine, Y. and Prasetyo, H. 1996. The criteria for evaluation of genetic diversity in small animal populations. Proc. 8th AAAP Anim. Sci. Cong., 2: 348-349. Furukawa, T., Takeda, H., Satoh, M., Ishii, K., Hicks, C. In situ Conservation Methodology for Farm Animals http://www.angrin.tlri.gov.tw/english/APEC/In_situ.htm Goddard, M.G.; Smith, C. Optimum number of bull sires in dairy cattle breeding. Journal of Dairy Science, v.73, p.1113-1122, 1990. Gowe, R. S., Robertson, A. and Latter, B. D. H. 1959. Environment and poultry breeding problems. 5. The design of poultry control strains. Poult. Sci., 38: 462-471. Gutierrez, J.P., Goyache, F. (2005) A note on ENDOG: a computer program for analysing pedigree information. J. Anim. Breed. Genet. 122:172176. Gutierrez, J.P., Goyache, F., Cervantes, I. (2009) User´s Guide, ENDOG v4.6, A Computer Program for Monitoring Genetic Variability of Populations Using Pedigree Information, 39p. http://www.ucm.es/info/prodanim/html/JP_Web_archivos/EN_Us_G_.p df Hill W.G. 1979. A note on the effective population size with overlapping generations. Genetics, 92:317-322. Henson, E. L. 1992 . In situ conservation of livestock and poultry. FAO Animal Health and Health Paper, 99: 1-112.. Hill, W. G. Estimation of genetic change. I. General theory and design of control populations. Anim. Breed. Abst., 40: 1-15. James, J.W. A note on selection differentials and generation length when generations overlap. Animal Production, n.24, p.109-112, 1977. Kimura, M. and Crow, J. F. 1963. On the maximum avoidance of inbreeding. Genet. Res., 4: 399-415. Lacy, R.C. (1989) Analysis of founder representation in pedigrees: founder equivalents and founder genome equivalents. Zoo Biology 8:111-123. Lush, J.L. Animal breeding plans. 3 ed. Ames: Iowa State College Press. 443p. 1945. Maccluer, J.; Boyce, B.; Dyke, L. et al. Inbreeding and pedigree structure in Standardbred horses. Journal of Heredity. n.74, p. 394-399, 1983. Macneil, M.D.; Dearborn, D.D.; Cundiff, L.V. et al. Effects of inbreeding and heterosis in Hereford females on fertilility, calf survival and preweaning growth. Journal Animal. Science., n.67, p.895-901. 1989. 24 Maignel L.; Boichard, D.; Verrier E. et al. Genetic variability of French dairy breeds estimated from pedigree information. Interbull Bull, n.14, p.49-54, 1996. Meuwissen, T.H.E.; Woolliams, J. Effective sizes of livestock populations to prevent a decline in fitness. Theoretical and Applied Genetics, v.89, p.1019-1026, 1994. Navarro, C.I. Estructura genética del caballo de pura raza Árabe Español y su influencia em razas derivadas: aplicación de nuevas metodologias en El cálculo Del tamño efectivo. Tese de Doutorado. Madrid (Espanha): Universidad complutense de Madrid, 2008. Nei, M. 1987. Molecular Evolutionary Genetics, Columbia Univ. Press, New York, U.S.A. Nei, M.; Maruyama, T.; Chakraborty, R. et al. The bottleneck effect and genetic variability in populations. Evolution , v.29, p.1-10, 1975. Nomura, T. and Yonezawa, K. 1996. A comparison of four systems of group mating for avoiding inbreeding. Genet. Sel. Evol., 28: 141-159. Nomura, T.; Honda, T.; Mukai, F. et al. Inbreeding and effective population size of Japanese Black cattle. Journal Animal. Science., v.79, p.366370, 2001. Obata, T., Satoh, M. and Mikami, H. 1994. Development of techniques and breeding strategies for pig strain improvement in Japan. JARQ, 28: 253-261. Quaas, R.L. 1976 Computing the diagonal elements of a large numerator relationship matrix. Biometrics. 32:949-953. Rege, J.E.O.; Gibson, J.P. Animal genetic resources and economic development: issues in relation to economic valuation. Ecological Economics, New York, v.45, p.319-330, 2003. Robertson, A. 1964. The effect of non-random mating within inbred lines on the rate of inbreeding. Genet. Res., 5: 164-167. Robison, P. and Bray, D. F. 1965. Expected effects on the inbreeding and rate of gene loss of four methods of reproducing finite diploid populations. Biometrics, 21: 447-458. Takeda, H., Furukawa, T., Satoh, M., Nirasawa, K. and Hicks, C. 1998. Evaluation of genetic diversity and resemblance using genetic markers in small populations. Proc. 6th Wld. Cong. on Genet. Appl. to Livest. Prod., 26: 57-60. Takeda, H., Obata, T., Furukawa, K., Nirasawa, K. and Takahashi., H. 1997. Use of marker information to maintain variability in small populations. In Animal Genetic Resources: Efficient Conservation and Effective Use, Ed. Oishi, T., AFFRC/NIAR, Tsukuba, Japan, pp. 167-174. Wang, J. 1995. Exact inbreeding coefficient and effective size of finite populations under partial sib mating. Genetics, 140: 357-363. Weiner, G. 1989. Animal Genetic Resources – A global programme for sustainable development. FAO Animal Production and Health Paper, 80. Wright, S. 1921. Systems of mating. Genetics, 6: 111-178. Wright, S. 1923. Mendelian analysis of the pure breeds of livestock. I. The measurement of inbreeding and relationship, Journal of Heredity. 14:339-348 Wright, S. 1931. Evolution in Mendelian population. Genetics 16:97-159 25 Wright, S. 1938. Size of population and breeding structure in relation to evolution. Science, 87: 430-431. Wright, S. 1969. The theory of gene frequencies, VII. Chicago: The University Of Chicago Press, 511p. Wright, S. 1978. Evolution and the genetics of populations: Variability within and among natural populations. University of Chicago Press: Chicago. USA, v.4. Yamada, Y. 1980. The importance of mating systems in the conservation of animal genetic resources. FAO Animal Production and Health Paper, 24: 268-278. 26