COCOS GRAM-POSITIVOS STAPHYLOCOCCUS

COCOS GRAM-POSITIVOS
STAPHYLOCOCCUS
STREPTOCOCCUS
S. pneumoniae  sensível à Optoquina.
S. aureus
Coco agrupado em
forma de cacho.
Beta hemólise em
ágar sangue.
Alfa Hemolítico
S. epidermidis
S. saprophyticus
Sensível a
Novobiocina
Resistente a
Novobiocina.
S. viridans  resistente à Optoquina.
S. pyogenes  sensível à Bacitracina / PYR positivo /
Resistente a Co-Trimoxazol / Grupo A de Lancefiel.
Beta Hemolítico
S. agalactie  Camp Test Positivo / Grupo B de
Lancefield.
Não A e não B  sensível ao Co-Trimoxazol.
Gama Hemolítico
Enterococcus  Bile esculina positiva / NaCl 6,5
positivo. Também pode ser alta e beta hemolítico.
Não Enterococcus (bovis)  bile esculina positiva / NaCl 6,5
negativa.
Crescem em MacConkey.
Fermentação da Glicose
Podem ser oxidase (+) ou (-).
Oxidase negativa
BACILOS GRAM NEGATIVOS
Costumam ser encontrados em
ambiente hospitalar – resistência.
Reduz nitrato a nitrito.
Diferenciação exige testes bioquímicos –
olhar tabela.
NÃO-FERMENTADORES
ENTEROBACTÉRIAS
LACTOSE POSITIVA
E. coli  citrato (-) / Indol (+).
Pseudomonas aeruginosas  bastonentes móveis, aeróbios
obrigatórios, oxidase positiva.
Klebsiella
Burkholderia cepacia
Enterobacter
Citrobacter
Testes Bioquímicos:
Citrato
Indol
Proteus sp.
LACTOSE NEGATIVA
H2S
Providencia sp.
Fermentação de
Carboidratos
Salmonella sp.  H2S (+)
Produção de Gás
Acinobacter  cocobacilo, aeróbio, oxidase negativa.
Stenotrophomonas maltophila  DNAse e lisina positivas,
oxidase negativa.
Bordetella bronchiseptica
Moraxella catarrhalis cocos, oxidase postiva, catalse
positiva, colônias secas, frágeis e bem características. Não faz
antibiograma – só beta lactamase.
Shigella sp.  H2S (-)
Serratia sp.
Teste Coagulase  realizada com reagente contendo plasma de coelho – quando positiva há formação de pequenos agregados.
Teste Catalase  realizada com peróxido de hidrogênio – quando positiva há efervescência (formação de bolhas).
Teste Oxidase 
MEIOS DE CULTURA
ÁGAR MACCONKEY
É um meio seletivo para Gram Negativos
 Meio diferencial para lactose:
 Lactose positiva: colônias vermelho tijolo a rosa.
 Lactose negativa: colônias incolores

ÁGAR CLED
Não é seletivo – crescem Gram (-), Gram (+) e
Leveduras.
 Meio diferencial para Lactose:
 Lactose Positiva: meio muda de cor – amarelo.
 Lactose Negativa: fundo pode ficar azul e as
colônias incolores.

ÁGAR SANGUE
Meio não seletivo.
 Diferencial para alfa, beta e gama hemólise dos
Streptococcus.

ÁGAR CHOCOLATE

Possui fator X e fator V, por isso, possibilita o crescimento de
bactérias fastidiosas, como Haemophilus.
TESTES BIOQUÍMICOS PARA IDENTIFICAÇÃO DE ENTEROBACTÉRIAS:
TUBO 1 – Meio de EPM
LTD (desaminação do L-triptofano),
Glicose, Gás, H2S e Uréia.
 Meio sólido na cor verde – tampa branca.
 Inoculação: picada central até o fundo e semear na superfície – deixar tampa
frouxa.
 Triptofano: prova positiva quando a superfície fica verde escura ou acastanhada.
 Leitura da Glicose: observação de coloração amarela na base do tubo.
 Produção de gás: formação de bolhas ou rachaduras.
 Hidrólise de Uréia: prova positiva quando há coloração azul esverdeada fraca na
base.
 Produção de H2S: aparecimento de cor negra na base.
TUBO 2 – Meio de Lisina
Descarboxilação da L-lisina
 Meio caldo na cor púrpura – tampa branca.
 Inoculação: dissolução – fechar bem a tampa.
 Lisina: cor amarela indica reação negativa – qualquer outra cor indica reação
positiva.
TUBO 3 – Meio de MIO
 Meio semi-sólido na cor púrpura – tampa vermelha.
 Inoculação: picada central única – deixar a tampa frouxa.
 Motilidade: turvação do meio – crescimento apenas na picada é considerado
prova negativa.
 Ornitina: cor amarela é considerada prova negativa – qualquer outra cor é prova
positiva.
 Para o teste de Indol é preciso adicionar três gotas do Reativo de Kovacs após a
incubação e leitura da Ornitina.
 Indol: positivo se houver formação de um anel de cor rosa / vermelha na
superfície.
Motilidade, descarboxilação da Ornitina
e produção de Indol
TUBO 4 – Meio de Citrato
Utilização de Citrato como única fonte
de Carbono.




Meio sólido na cor verde – tampa preta.
Inoculação: semear na superfície / inóculo leve – deixar tampa frouxa.
Citrato: prova positiva quando há aparecimento de coloração azul na superfície.
No caso de prova negativa o meio permanece com a cor original.




Meio caldo na cor verde – tampa branca.
Inoculação: dissolução – fechar bem a tampa.
Rhamnose: prova positiva quando o meio ficar amarelo.
No caso de prova negativa o meio permanece com a cor original.
TUBO 5 – Meio de Rhamnose
Fermentação de Rhamnose
Agar TSI
Agar Ferro Lisina
Agar Citrato de Simmons
Ágar Uréia (Chirstensen)
Meio MIO
Caldo MR-VP
Caldo Fermelho Fenol Ramnose