Baixar este arquivo PDF - Faculdade Evangélica do Paraná

Transcrição

TRABALHO DE CONCLUSÃO DE CURSO
ASPECTOS BIOTECNOLÓGICOS DE UM POLISSACARÍDEO DE
SACCHAROMYCES CEREVISIAE (MANANA) NA MEDICINA
VETERINÁRIA
BIOTECHNOLOGICALASPECTSOF APOLYSACCHARIDEOFSACCHAROMYCES
CEREVISIAE(MANNAN) INVETERINARY MEDICINE
Vanessa Baker1
Dicezar Gonçalves2
RESUMO
Manana é um polissacarídeo extraído de Saccharomyces cerevisiae.A biomassa da levedura é
produzida em três setores industriais importantes no Brasil, o setor sucroalcooleiro, cervejeiro e de
panificação, além de ser fonte de nitrogênio em meios de cultura na indústria farmacêutica.Por sua
capacidade de melhorar o sistema imune, aumentar a produção de ácido lático, aumentar a
colonização de bactérias benéficas no intestino, ação antimicrobiana, entre outros benefícios, a
manana é amplamente utilizada como prebiótico na nutrição animal. É encontrada comercialmente
como BioMos®, suplemento nutricional fabricado pela Alltech, Inc. Além dos benefícios à saúde e
desempenho dos animais, a manana é utilizada como uma alternativa para a redução do uso de
antibióticos em animais de produção, devido aos prejuízos que estes causam no produto final e ao
meio ambiente. Pesquisas demonstraram também sua utilização no tratamento de Leishmaniose,
mostrando que a manana também pode ser utilizada na saúde humana.
Palavras–Chave: Antibiótico – Levedura – Prebiótico – Saúde humana
ABSTRACT
Mannanis a polysaccharideextracted fromSaccharomycescerevisiae.Theyeastbiomassis produced in
threemajor industrialsectorsin Brazil, the sugarcane sector, brewerandbakery, as well as beinga
source of nitrogenin culture mediain the pharmaceutical industry. Forits ability to enhancethe
immune system, increasing the production oflactic acid, increasing thecolonizationof beneficial
bacteriain the gut, antimicrobial, among other benefits,mannanis widely used asprebioticsin animal
nutrition.It is foundcommercially asBioMos®,nutritional supplementmanufactured byAlltech, Inc.
In addition to thebenefits to healthand performanceof animalsmannanis used asan alternative
toreduce the use ofantibioticsin farm animals, due to the damagethey causein the final productand
the environment. Surveysalso showtheir usein the treatment ofleishmaniasis, showing that
mannanmay also be usedon human health.
Key Words: Antibiotic – Yeast – Prebiotic – Human health
1
Acadêmica de Medicina Veterinária da
Faculdade Evangélica do Paraná
2
Prof. Dr. de Parasitologia e Saneamento e Zoonoses do curso de
Medicina Veterinária da Faculdade Evangélica do Paraná
Aprovado em: 05/12/2012
Autor para correspondência: Vanessa Baker
Contato: [email protected]
Revista Eletrônica da Faculdade Evangélica do Paraná, Curitiba, v.2, n.4, p.51-62, out./dez. 2012. 51
ASPECTOS BIOTECNOLÓGICOS DE UM POLISSACARÍDEO DE SACCHAROMYCES
CEREVISIAE (MANANA) NA MEDICINA VETERINÁRIA
MANANA
A manana é um polissacarídeo extraído da parede celular de cepas da levedura
saccharomycescerevisiae(1). Ela é responsável pelo reconhecimento e interações célula-célula,
interações com o ambiente e determinam a especificidade imunológica da levedura(2).
O polissacarídeo possui atividade antimutagênica e antioxidante, estimula a produção de
anticorpos(3), além de apresentar importantes características, como boa solubilidade e massa
molecular relativamente pequena (15-30KDa)(4).
Nos animais a função e a morfologia intestinais são influenciadas por esse polissacarídeo(5), pois
a manana fornece a possibilidade de sítios de ligação alternativos para bactérias gram-negativas que
atacam o epitélio intestinal usando fímbrias mannose-específica tipo 1(6), bloqueando a fixação
bacteriana ao epitélio intestinal(7),além de ligar-se a receptores de inumeras células de defesa do
intestino, que ativam as defesas imunológicas, tais como a fagocitose(8).
A suplementação com manana pode ter efeito prebiótico por aumentar a produção de ácido
lático, induzindo desde modo, a proliferação de bactérias benéficas e melhorando o sistema
imune(9).
Pesquisas laboratoriais mostraram que a incubação microbiológica deEscherichia coli,
Staphylococcus aureus, Candidatropicalis,tendo como fontes de nitrogênio a manana,suprimiu
ocrescimento de C.tropicalise E. coli, mas não deS.aureus(10).Esses autores observaram que a
manana, presente no extrato de levedurasnão sóinibiu o crescimento deE. coli, mas também
suprimiu a atividadedessas bactérias(11).
A manana pode ser encontrada comercialmente como BioMos®, um suplemento nutricional
fabricado pela Alltech, Inc.
A LEVEDURA
Saccharomyces cerevisiae é um ascomiceto leveduriforme, ou seja, o crescimento da colônia
se da por brotação das células, não existindo micélio(12,13). São fungos unicelulares e apresentam-se
na forma decélulas alongadas ou ovaladas(14).Na natureza, esta levedura pode ser encontrada em
videiras, macieiras e bromélias onde se adapta surpreendentemente bem às condições variáveis de
disponibilidade nutricional,pois se nutre basicamente dos carboidratos presentes nas flores e
frutos(15).
A biomassa de levedura Saccharomyces cerevisiae tem sido produzida no Brasil em três
setores industriais importantes: o setor sucroalcooleiro, como subproduto da produção de etanol(16);
o setor cervejeiro, o setor de panificação(17)e na indústria farmacêutica onde é muito utilizada como
fonte de nitrogênio em meios de cultura, produzidos por exemplo, pelas empresas Himedia e
Merck.
As leveduras não são habitantes normaisdo aparelho digestório; mas algumas cepaspassaram
a ser incorporadas na alimentação animal comofonte direta de proteína, geralmente a partir de
resíduos defermentados industriais ou então como probióticos a partir da ingestão direta de células
viáveis queestimulam a microbiota ruminal(18). De acordo com Arcos-García(19) e García(20), a
alimentação com probióticos, como, por exemplo, Saccharomyces cerevisiae, tem sido utilizada
para melhorar a digestibilidade de fibras em ruminantes, propiciando aumento do número de
bactérias celulolíticas, por produzir anaerobiose ruminal.Osmetabólitosproduzidos em cultura de
S.cerevisiae, como a manana, possuem efeitos modulatóriosno sistema imune(21)e atividade
antimicrobiana contra patógenos(10). Foi demonstrados que isolados proteicos obtidos a partir de
células de levedura podem ter melhor qualidade nutricional do que as células íntegras, porque o seu
conteúdo de ácidos nucléicos, a presença de componentes ativos indesejáveis e o efeito deletério da
parede celular sobre a biodisponibilidade de nutrientes são atenuados(22).
A parede celular daS. cerevisiae é organizada em duas camadas que são compostas por três
macromoléculas principais: 1) manana-proteína, um complexo no qual o polissacarídeo manana está
covalentemente ligado à proteína; 2) glucana, um polissacarídeo de β-1,3 e β-1,6 glicose e 3)
quitina, um polímero de β-1,4 N-acetilglicosamina(23-24).A distribuição aproximada, em peso, desses
polissacarídeos e proteínas na parede celular é de: 50% β-1,3-glucanas, 10% β-1,6-glucanas,
40%manana e 1-3% quitina(25). A parede é resistente à ação de enzimas digestivas, em
monogástricos, e possui alto conteúdo de ácidos nucléicos(26-27)epor estas razões, é importante o
desenvolvimento de métodos de processamento da biomassa, que permitam minimizar os problemas
mencionados(28).É possível extrair a partir da parede celular da levedura, produtos de alto valor
biológico, utilizando-se um processo de baixo custo e etapas simples (rompimento mecânico,
extração a quente e tratamento com protease). Este processo pode ser de grande interesse para as
indústrias de fermentação alcoólica no futuro, pois viabiliza a utilização da massa celular de
levedura residual do processo de fermentação(28).
EXTRAÇÃO DA MANANA
A extração da manana geralmente é realizada a partir do fracionamento da parede celular
desengordurada de S. cerevisiae. A fração da parede celular é suspensa em NaOH 1%,
homogeneizada e aquecida a 75ºC por 20 minutos, em banho com agitação. Após resfriada a fração
é centrifugada por 30 minutos a 5ºC. Após esse processo é obtido um resíduo composto das
glicoproteínas glucana e manana que é submetido à extração com KOH 2%, durante 3 horas a 93ºC.
O sobrenadante resultante é tratado com três volumes de etanol 95% durante 30 minutos e levado
para câmara fria durante 12 horas a 4ºC. Após esse tempo é homogeneizado, centrifugado a 14.000g
por 30 minutos a 5ºC e precipitado “over night” com etanol 95%, para obtenção da fração
manana(29).
UTILIZAÇÃO EM ESPÉCIES ANIMAIS
A inclusão da manana como suplemento para dietas em animais têm mostrado um efeito
positivo sobre a resposta imune em várias espécies(30).
Bovinos
A incorporação de aditivos microbianos e culturas de S. cerevisiae na dieta vêm sendo uma
prática comum na nutrição de ruminantes. Vários produtos a base dessa levedura foram testados
para interferir no consumo de matéria seca, no pH ruminal e na digestibilidade de nutrientes(31-32-33),
porém a maioria dos estudos são realizados em vacas em lactação e estudos in vitro(11).
Adição demanana ao soro do leite fornecido a bezerros melhora a pontuação decoliformes
fecal, em comparação aos antibióticos. Nestes estudos também ocorreu à redução da diarreia
neonatal, indicando que a manana pode efetivamente substituir antibióticos(5). Este fato pode ser
explicado devido a manana bloquear a fixação destas bactérias ao epitélio intestinal(7). A
alimentaçãode bezerros com cultura de S. cerevisiae reduz a incidência de hipertermia corporalede
tratamentos com antimicrobianosdesde o nascimento até46dias deidade(34). Franklin(35)
suplementando vacas secas com manana observou um aumento da resposta imune humoral ao
rotavírus e uma tendência à melhorar a transferência de anticorpos contra o rotavírus para os
bezerros. A suplementação de vacas no período seco com manana pode aumentar a função da
barreira imunológica e prevermelhortransferência deimunidade passiva paraa prole contra
organismos específicos, o que pode resultar na diminuição do uso de antibióticos em bezerros e
tratamentos médicos(35).
Pequenos Ruminantes
Foi demonstrado quealgumas cepas deS. cerevisiaefavorecem o estabelecimento debactérias
fibrolíticasno tratodigestivo decordeiros, o que acelerou as atividadesmicrobianasdo rúmen,
favorecendoa transiçãodeuma dieta líquida para uma dieta sólida nestes animais(36).
Suínos
Filhotes de suínos suplementadas com manana tiveram um desempenho melhor do que as
não suplementadas, isto, devido a concentrações aumentadas de imunoglobulinas colostrais das
matrizes suplementadas(37-38). O aumento das concentrações dessas imunoglobulinas foi o fator
associado à melhora nodesempenho dos suínos(35).Alimentando matrizes prenhas com 0,20% de
manana três semanas antes do parto e 0,10% ao longo do período de lactação, de 21 dias, produziu
leitões com maior peso ao nascimento e peso ao desmame(38).
A manana tem sido consideradacomo uma alternativa à suplementação de cobre em
excessona alimentação de suínospara melhora no desempenho(39).Em um experimento realizado por
Kim(40)comparando o efeito de manana e níveis de proteína na dieta de leitões, observou que a
suplementação com manana melhorou o ganho de peso e consumo de ração independentemente do
nível de proteína.
Equinos
Potros em fase de amamentação são susceptíveis a diversos patógenos que causam
diferentes problemas a saúde como diarreia, enterites, septicemia, e muitas vezes levando a morte.
Esses problemas podem resultar em grandes despesas veterinárias e perdas financeiras para o
proprietário do animal(30).
Pesquisas com a utilização de manana na nutrição de equinos não é muito citada na
literatura, porém os resultados obtidos em estudos com outras espécies sugerem que a
suplementação com manana para éguas prenhas pode aumentar os níveis de imunoglobulinas no
colostro e protegê-la da colonização de organismos patogênicos no intestino. Suplementando essas
éguas com 10 gramas de manana por 56 dias antes da data prevista de parto até os primeiros 56 dias
de lactação aumentaram significativamente os níveis de imunoglobulinas G e A e aumentaram o
teor de imunoglobulina M no colostro(30).
Fornecimento de manana para potros pode protegê-los de organismos patogênicos presentes
no meio ambiente que, por conseguinte, podem ter uma incidência reduzida de doenças causadas
por estes microorganismos. Segundo Spearman(30)esta é umaárea promissora parapesquisas futuras.
Aves
Extratos da parede de Saccharomyces cerevisiae,porpossuirem atividade imuno-moduladora,
são utilizados comoalternativas aos antibióticos, para a promoção do crescimentoe promoção da
resistência a doençasemavicultura(41).Produtos a base de manana são utilizados desde 1993 como
suplemento para frangos de corte(42).
A suplementação de manana na dieta de galinhas afetou a microflora intestinal com aumento
de Bifidobacterium spp. eLactobacillus spp., enquanto diminuiu a colonizaçao por Salmonella
enteritidis(43).Utilização de manana para pintos de corte também influenciou beneficamente as
populações bacterianas do aparelho digestivo(44). Em estudos realizados em frangos, as
concentrações de imunoglobulinas foram maiores em aves suplementadas commanana, comparado
com assuplementadas com uma dieta controle(45). Outros estudos reportaram melhorias em
desempenho,da função imune, ganho de peso, conversão alimentar, transformação linfocitária(39,46).
As paredes da levedura, fonte de manana e glucana, mostraram melhorar o crescimento tanto de
pintos de corte(47)como de perus(48).Finuance(49)suplementando perus com menos de 6 semanas de
idade, observou uma contagem superior de bactérias anaeróbias e um nível mais baixo de
Coliformes perfringens em culturas fecais.
Mais de 150frangos de corteforam analisados paracomparar coletivamenteos efeitos
dedietassuplementadascom mananae controlenegativoe / oupositivode antibióticos nasdietas.A
conclusão foi deque os resultadosda suplementaçãocommanana resultou em melhorpeso
corporaletaxas de conversão alimentarcomparadosà suplementaçãocom antibióticoenquantoreduziu
significativamentea taxa de mortalidade(42). Em dietas dematrizes de corte,a adição
demananaaumentou
significativamente
aresposta
de
anticorposparao
vírus
da
doençabursalinfecciosa, e também aumentoutítulos de anticorpos maternos, em progênies dos
criadores(50).
Peixes e animais aquáticos
Dietas suplementadas com manana e glucana, proporcionam meios de compensar os efeitos
indesejáveis do estresse comuns àpiscicultura(51).
Pesquisas a respeito do uso de manana na dieta de animais aquáticos têm sido escassos.
Segundo autores, diferentes concentrações de manana adicionados à dieta de peixes melhoraram a
taxa de crescimento, a taxa de conversão alimentar, a absorção de proteínas, o ganho de peso e
reduzem a taxa de mortalidade(52-53-54)
Dieta para pós-larva de camarão com manana apresentou melhora no desempenho produtivo
e conversão alimentar, com maior taxa de sobrevivência e peso vivo final. Contudo houve a redução
proteica quando se aumentava o nível de inclusão de manana na dieta(55).
Suplementação alimentar com o composto manana e glucana em tilápias do Nilo reduziu a
profundidade de cripta, com a otimização da superfície de absorção intestinal representada pelo
epitélio das vilosidades resultando em melhores coeficientes de digestibilidade de proteína bruta(56).
Pequenos animais
A suplementação com manana na dieta de cães aumentou a contagem total de linfócitos e a
concentraçãosérica de imunoglobulina A, tendeu a aumentar(57).
Strickling(58)constatou que,
emcães,
a
contagem de
C.perfringensdiminuiu
quandosuplementado comcinco gramas de manana por kilograma de ração. Em cãessuplementados
com doisgramas de manana por diaapresentaram redução significativade bactérias aeróbiasnas fezes
e apresentarammaiores populaçõesde Lactobacillussp.(57).Um grama por kilogramaBWpor dia
demananaparaquatrofêmeas beagleresultouna diminuição dopHfecal(59).
MANANA COMO ALTERNATIVA AOS ANTIBIÓTICOS
A utilização e redução do uso de antibióticos em dietas de animais de produção vêm sendo
muito questionada nos últimos anos, devido ao impacto negativo deste uso nas questões ambientais
e de saúde(30). Na União Européia, por exemplo, já existe uma legislação que restringe o uso dos
antibióticos em produções leiteiras. Deste modo, produtos alternativos que demonstrem
desempenho, saúde e beneficios econômicos semelhantes aos antibióticos são necessários(35).
A S. cerevisiae é utilizada como alternativa aos aditivos antimicrobianos por mais de 10
(60)
anos . Indústrias de suínos, aves e gado têm utilizado a manana como suplemento alimentar, pois
ela pode servir como uma alternativa viável ao uso dos antibióticos na formulação de rações(30).
Um exemplo da utilização da manana em substituição aos antibióticos foi na pesquisa
realizada por Stanley(61) onde utilizou-se manana no lugar de terramicina como promotor de
crescimento em perus.
UTILIZAÇÃO DA MANANA NA SAÚDE PÚBLICA
Numa pesquisa conduzida por Marcoline, foi testada a utilização de polissacarídeos, como a
manana, como tratamento para Leishmaniose cutânea. O tratamento atual para a doença é realizado
principalmente com antimoniais pentavalentes, utilizados a mais de 60 anos, porém estes
medicamentos além de apresentarem alta toxicidade promovem resistência parasitária e vários
efeitos colaterais.Considerando a gravidade desses efeitos, têm sido desenvolvidos estudos visando
encontrar tratamentos alternativos para as leishmanioses(62).
A doença é causada por protozoários do gênero Leishmania. O parasita existe em duas
formas, a promastigota que é infectante e invade os macrófagos, e a forma amastigota, dentro dos
macrófagos, onde é mais resistente à defesa do hospedeiro, causando as leishmanioses(62).
Foram testados os polissacarídeos por apresentarem capacidade de ativar macrófagos para
executar atividade microbicida, o que inclui a atividade leishmanicida. Cantos(63)utilizando
concentrações iguais de antimônio complexado e não complexado, observou no segundo caso 60%
de atividade leishmanicida em macrófagos peritoneais infectados in vitro com
Leishmaniaamazonensis, enquanto que o tratamento com o antimônio complexado com manana
apresentou 90% de atividade.Zimosana, uma mistura de manana e glucana preparada a partir de
leveduras,apresentou efeito ativador de macrófago(64).Também foi observado a capacidade da
manana em aumentar a produção de óxido nítrico(65), um gás produzido por macrófagos, células
endoteliais vasculares, neurônios, plaquetas, neutrófilos, células do trato respiratório, hepatócitos e
fibroblastos, altamente permeável a membranas que têm importante atuação na defesa
antimicrobiana, inflamação e angiogênese(66).
REFERÊNCIAS
1 .Mrša V. Cell wall of the yeast saccharomyces cerevisiae. Food technology and Biotechnology.
1993;31(1): 43-50.
2. Ruiz-Herrera J. Fungal cell wall: structure, synthesis, and assembly. 1992. In: Garcia F.
Suplementação alimentar com β-glucano e mananoligossacarídeo para tilápias do Nilo em tanquesrede. [tese]. Jaboticabal: Universidade Estadual Paulista, 2008. 120p. Doutorado em Aquicultura.
3. Savage TF, Cotter PF, Zakrzewska EI. The effect of feeding a mannanoligosaccharide on
imunoglobulins, plasma IgA and bile IgA of Wrolstad MW male turkeys.Poult. Sci. 1996; 75:143.
In: Heinrichs AJ, Jones CM, Heinrichs BS. Effects of mannan oligosaccharide or antibiotics in
neonatal diets on health and growth of dairy calves. J. Dairy Sci. 2003; 86:4064-69.
4. Krizková L, Duracková Z, Sandula J, Sasinková V, Krajcovic J. Antioxidative and antimutagenic
activity of yeast cell wall mannans in vitro.Mutat. Res. [periódico on line]. 2001 [capturado em:16
out 2012]; 497(1-2):213-22. Disponível em: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11525924.
5. Heinrichs AJ, Jones CM, Heinrichs BS.Effects of mannan oligosaccharide or antibiotics in
neonatal diets on health and growth of dairy calves. J. Dairy Sci. 2003; 86:4064-69.
6. Ferket PR, Parks CW, Grimes JL. Benefits of dietary antibiotic and mannanoligosaccharide
supplementation for poultry.Multi-State Poultry Meeting. 2002.
7. Newman KE. Mannan-oligosaccharides: Natural polymers with significant impact on the
gastrointestinal microflora and the immune system. Proc. Alltech’s 10thAnnu.Symp.1994; 167-174.
In: Magalhães VJA, Susca F, Lima F, Branco AF, Yoon I, Santos JEP. Effect of feeding yeast
culture on performance, health, and immunocompetence of dairy calves. J. Dairy Sci. 2008;
91:1497-509.
8. Murphy EA, Davis JM, Brown AS, Carmichael MD, Ghaffar A, Mayer EP. Oat β-glucan effects
on neutrophil respiratory burst activity following exercise. Med. Sci. Sports Exerc. 2007; 39:639644. In: Magalhães VJA, Susca F, Lima F, Branco AF, Yoon I, Santos JEP. Effect of feeding yeast
91:1497-509.
In: Garcia F. Suplementação alimentar com β-glucano e mananoligossacarídeo para tilápias do Nilo
em tanques-rede. [tese]. Jaboticabal: Universidade Estadual Paulista, 2008. 120p. Doutorado em
Aquicultura.
10. Jensen GS, Patterson KM, Yoon I. Nutricional yeastculturehasspecificantimicrobialpropertieswithoutaffectinghealthy flora. Preliminaryresults. J. Anim. Feed Sci. 2008;
17:247-52.
11. Magalhães VJA, Susca F, Lima F, Branco AF, Yoon I, Santos JEP. Effect of feeding yeast
91:1497-509.
12. Agrios GN. Plant pathology. 4.ed. San Diego: Academic Press; 1997. 635p. In: Labanca ERG.
Purificação parcial de elicitores presentes em saccharomycescerevisiae: Atividade como indutores
de resistência em pepino (cucumissativus) contra colletotrichumlagenarium e da síntese de
gliceolinas em soja (glycinemax). [dissertação]. Piracicaba: Escola Superior de Agricultura Luiz de
Queiroz, 2002. 107p. Mestradoemagronomia.
13. Isaac S. Fungal and plant interactions.Fungal-plant interactions.Cambridge: Champmanand
Hall; 1992. 418p. In: Labanca ERG. Purificação parcial de elicitores presentes em
saccharomycescerevisiae: Atividade como indutores de resistência em pepino (cucumissativus)
contra colletotrichumlagenarium e da síntese de gliceolinas em soja (glycinemax). [dissertação].
Piracicaba: Escola Superior de Agricultura Luiz de Queiroz, 2002. 107p. Mestrado em agronomia.
14. Pires LCB. Utilização de leveduras na alimentação de ruminantes. Cadernos de Pós-Graduação
da Fazu. 2011; 2.
15. Mathias CJ. Estudo da função da proteína Alr1 de saccharomycescerevisiae na desintoxicação
de metais. [dissertação]. Rio de Janeiro: UFRJ, 2008. Mestrado em ciências.
16. Furco AM. Produção de biomassa de levedura em destilarias de álcool. Anais do “workshop”
sobre produção de biomassa de levedura: utilização em alimentação humana e animal. Instituto de
Tecnologia de Alimentos. Campinas: 1996;52-58. In: Chaud SG, Scarbieri VC, Vicente E, Silva
ND, Alves AB, Mattos JAR. Influência de frações da parede celular de levedura
(saccharomycescerevisiae) sobre os índices séricos de glicose e lipídios, microbiota intestinal e
produção de ácidos graxos voláteis (AGV) de cadeias curtas de ratos em crescimento. Ciênc.
Tecnol. Aliment. 2007; 27(2):338-48.
17. Peixoto N. Processamento de produtos de biomassa de levedura para alimentação humana:
potencial, mercado interno e externo. Anais do “Workshop” sobre produção de biomassa de
levedura:utilização em alimentação humana e animal. Instituto de Tecnologia de Alimentos.
Campinas: 1996;90-98. In: Chaud SG, Scarbieri VC, Vicente E, Silva ND, Alves AB, Mattos JAR.
Influência de frações da parede celular de levedura (saccharomycescerevisiae) sobre os índices
séricos de glicose e lipídios, microbiota intestinal e produção de ácidos graxos voláteis (AGV) de
cadeias curtas de ratos em crescimento. Ciênc. Tecnol. Aliment. 2007; 27(2):338-48.
18. Cuarón JAI. La influéncia de lalevaduraenla dieta, respuesta microbiológica antagonista. Anais
do Simpósio sobre aditivos alternativos na nutrição animal. Campinas: 2000;71-79. In: Pires LCB.
Utilização de leveduras na alimentação de ruminantes. Cadernos de Pós-Graduação da Fazu. 2011;
2.
19. Arcos-García JL, Catrejón FA, Mendoza GD, Pérez-Gavilán. Effect of two commercial yeast
cultures with saccharomyces cerevisiae on ruminal fermentation and digestion in sheep fed sugar
cane tops. Livest. Prod. Sci. 2000;63(2):153-57. In: Pires LCB. Utilização de leveduras na
alimentação de ruminantes. Cadernos de Pós-Graduação da Fazu. 2011; 2.
20. García CCG, Mendoza MGD, Gonzáles MS, Cobos PM, Ortega CME, Ramirez LR. Effect of a
yeast culture (saccharomyces cerevisiae) and monesin on ruminal fermentation and digestion in
sheep. Anim. FeedSci. Technol. 2000;83(2):165-70. In: Pires LCB. Utilização de leveduras na
alimentação de ruminantes. Cadernos de Pós-Graduação da Fazu. 2011; 2
21. Jensen GS, Hart AN, Schauss AG. An antiinflamatoryimmunogen from yeast culture induces
activation and alters chemokine receptor expression on human natural killer cells and B
lymphocytes in vitro. Nutr. Res. 2007;27:325-35. In: Magalhães VJA, Susca F, Lima F, Branco AF,
Yoon I, Santos JEP. Effect of feeding yeast culture on performance, health, and
immunocompetence of dairy calves. J. Dairy Sci. 2008; 91:1497-509.
22. Rosales FH. Yeast as protein source for human nutrition.A review.Acta Microbiology of the
Academy of Science of Hungary.Budapeste. 1984;31(3):159-72. In: Vilela ESD, Scarbieri VC,
Alvim ID. Determinação do valor proteico de células íntegras, autolisado total e extrato de levedura
(saccharomycessp.). Rev. Nutr. [periódico online]. 2000 [capturado em: 18 out 2012];13(3).
Disponível
em:
http://www.scielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S141552732000000300005&lng=en&nrm
=iso&tlng=pt
23. Fleet GH. Composition and structure of yeast cell walls. Curr.Top. Med. Mycol. 1985;1:24-56.
In: Santos LF, Sato HH. Isolamento de polímeros da parede celular de saccharomycescerevisiae e
avaliação da atividade antioxidante da manana-proteína isolada. Quím. Nova. [periódico online].
2009
[capturado
em:
16
out
2012];
32(2).
Disponível
em:
http://www.scielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0100-40422009000200010
24. Andrews BA, Asenjo JA. Enzimaticlysis and disruption of microbial cells.Tibtech. 1987;
5(10):273-7. In: Santos LF, Sato HH. Isolamento de polímeros da parede celular de
saccharomycescerevisiae e avaliação da atividade antioxidante da manana-proteína isolada. Quím.
Nova. [periódico online]. 2009 [capturado em: 16 out 2012]; 32(2). Disponível em:
http://www.scielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0100-40422009000200010
25. Lipke PN, Ovalle R. Cell wall architecture in yeast: New structure and new challenges. J.
Bacteriol. 1998; 180(15):3735-40.
26. Snyder HE. Microbial sources of protein. Advances in food research.1970;18:85-91. In: Vilela
ESD, Scarbieri VC, Alvim ID. Determinação do valor proteico de células íntegras, autolisado total e
extrato de levedura (saccharomycessp.). Rev. Nutr. [periódico online]. 2000 [capturado em: 18 out
2012];13(3).
Disponível
em:
=iso&tlng=pt
27. Gávez A, Ramíres MJ, García-Garibay M. Chemical composition of a mixture of single-cell
protein obtained from Kluyveromycesfragilis and whey proteins. ArchivosLatinoamericanos de
Nutrición. 1990; 40(2):252-62. In: Vilela ESD, Scarbieri VC, Alvim ID. Determinação do valor
proteico de células íntegras, autolisado total e extrato de levedura (saccharomycessp.). Rev. Nutr.
[periódico online]. 2000 [capturado em: 18 out 2012];13(3). Disponível em:
=iso&tlng=pt
28. Vilela ESD, Scarbieri VC, Alvim ID. Determinação do valor proteico de células íntegras,
autolisado total e extrato de levedura (saccharomycessp.). Rev. Nutr. [periódico online]. 2000
[capturado
em:
18
out
2012];13(3).
Disponível
em:
=iso&tlng=pt
29. Otero MA, Vasallo MC, Verdieia O, Fernandez V, Betancourt D. A process for the complete
fraction of baker’s yeast. J. Chem. Techonol. Biotechnol. 1996; 61(1);67-71. In: Chaud SG,
Sgarbieri VC. Propriedades funcionais (tecnológicas) da parede cellular de leveduras da
fermentação alcoólica e das frações glicana, manana e glicoproteína. Ciênc.Tecnol.Aliment.
2006;26(2):369-79.
30. Spearman KR. Effect of mannan oligosaccharide (mos) suplementation on the immune status of
mares and their foals. [tese]. Flórida: Universidade da Flórida, 2004, 62p. Doutorado em ciências.
31. Callaway ES, Martin SA. Effects os saccharomyces cerevisiae culture on ruminalbactéria that
utilize lactate and digest cellulose. J. Dairy Sci. 1997;80:2035-44.
32. Kumar U, Sareen VK, Singh S. Effect of yeast culture supplement on ruminal microbial
populations and metabolism in buffalo calves fed a high roughage diet. J. Sci. Food Agric.
1997;73:231-36.
33. Dann HM, Drackley JK, McCoy GC, Hutjens MF, Garrett JE. Effects of yeast culture
(saccharomyces cerevisiae) on prepartum intake and postpartum intake and milk production of
jersey cows. J. Dairy Sci. 2000; 83:123-7.
34. Seymour WM, Nocek JE, Siciliano-Jones J. Effects of colostrum substitute and of dietary
brewer’s yeast on the health and performance of dairy calves. J. Dairy Sci. 1995;78:412-20.
35. Franklin ST, Newman MC, Newman KE, Meek KI.Imune parameters of dry cows fed mannan
oligosaccharide and subsequent transfer of immunity to calves. J. Dairy Sci. 2005; 88:766-75.
36. Chaucheyras-Durand F, Fonty G. Establishment of cellulolytic bacteria and development of
fermentative activities in the rumen of gnotobiotically-reared lambs receiving the microbial additive
saccharomyces cerevisiae CNCM I-1077. Reprod. Nutri.Dev. 2001; 41:57-68.
37. Newman KE, Newman MC. Evaluation of mannan oligosaccharides on the microflora and
immunoglobulin status of sows and piglet performance.J. Anim. Sci. 2001; 79(1).
38. O’Quinn PR, Funderburke DW, Tibbetts GW. Effects of dietary supplementation with mannan
oligosaccharides on sow and litter performance in a commercial production system. J. Anim. Sci.
2001; 79(1).
39. Davis ME, Maxwell CV, Brown DC, Rodas BZ, Johnson ZB, Kegley EB, Hellwig DH, Dvorak
RA. Effect of dietary mannan oligosaccharides and(or) pharmacological additions of copper sulfate
on growth performance and immunocompetence of weanling and growing/finishing pigs. J. Anim.
Sci. 2002; 80:2887-94.
40. Kim JD, Hyun Y, Sohn KS, Kim TJ, Woo HJ, Han IK. Effects of mannan oligosaccharide and
protein levels on growth performance and immune status in pigs weaned at 21 days of age. J. Anim.
Sci. 2000; 42(4):489-98.
41. Santos FS, Donoghue AM, Farnell MB, Huff GR, Huff WE, Donoghue DJ. Gastrointestinal
maturation is accelerated in turkey poults supplemented with a mannan-oligosaccharide yeast
extract (alphamune). Poultry Science. 2007;86:921-30.
42. Hooge DM. Broiler chicken performance may improve with MOS. Feedstuffs. 2003;75(1). In:
Spearman KR. Effect of mannan oligosaccharide (mos) suplementation on the immune status of
43. Fernandez F, Hilton M, Van Gils B. Dietary mannan-oligosaccharides and their effect on
chicken caecalmicroflora in relation to salmonella enteritidis colonization. Avian Pathology.
2002;31(1):49-58.
44. Spring P, Wenk C, Dawson KA, Newman KE. The effects of dietary mannanoligosaccharides
on cecal parameters and the concentrations of enteric bacteria in the ceca of salmonella-challenged
broiler chicks.Poultry Science. 2000;79:205-11.
In: Franklin ST, Newman MC, Newman KE, Meek KI. Imune parameters of dry cows fed mannan
oligosaccharide and subsequent transfer of immunity to calves. J. Dairy Sci. 2005; 88:766-75.
46. White LA, Newman MC, Cromwell GL, Lindemann MD. Brewers dried yeast as a source of
mannan oligosaccharides for weanling pigs. J. Anim. Sci. 2002; 80(10):2619-28.
47. Zhang AW, Lee BD, Lee SK, Lee KW, An GH, Song KB, Lee CH. Effects of yeast
(saccharomyces cerevisiae) cell components on growth performance, meat quality, and ileal mucosa
development of broiler chicks. Poultry Science. 2005; 84(7):1015-21.
48. Bradley GL, Savage TF, Timm KI. The effects of supplementing diets with saccharomyces
cerevisiae var. boulardii on male poult performance and ileal morphology. Poultry Science. 1994;
73(11):1766-70.
49. Finuance MC, Dawson KA, Spring P, Newman KE. The effect of mannan oligosaccharide on
the composition of microflora in turkey poults.Poult. Sci. 1999; 78(1):77. In: In: Spearman KR.
Effect of mannan oligosaccharide (mos) suplementation on the immune status of mares and their
foals. [tese]. Flórida: Universidade da Flórida, 2004, 62p. Doutorado em ciências.
50. Shashidhara RG, Devegowda G. Effect of dietary mannan oligosaccharide on broiler breeder
production traits and immunity. Poult. Sci. 2003; 82(8):1319-25.
51. Welker TL, Lim C, Yildirim-Aksoy M, Shelby R, Klesius PH. Immune response and resistance
to stress and edwardsiellaictaluri challenge in channel catfish, ictaluruspunctatus, fed diets
containing commercial whole-cell yeast or yeast subcomponents. JournalofAquicultureSociety.
2007;38(1):24-35. In: Garcia F. Suplementação alimentar com β-glucano e mananoligossacarídeo
para tilápias do Nilo em tanques-rede. [tese]. Jaboticabal: Universidade Estadual Paulista, 2008.
120p. Doutorado em Aquicultura.
52. Salze G, McLean E, Schwarz MH, Craig SR. Dietary mannan oligosaccharide enhances salinity
tolerance and gut development of larval cobia. Aquaculture. 2008; 274(1):148-52. In: Garcia F.
Suplementação alimentar com β-glucano e mananoligossacarídeo para tilápias do Nilo em tanquesrede. [tese]. Jaboticabal: UniversidadeEstadualPaulista, 2008. 120p. Doutorado em Aquicultura.
53. Staykov Y, Spring P, Denev S, Sweetman J. Effect of a mannan oligosaccharide on the growth
performance and immune status of rainbow trout (oncorbynchusmykiss). Aquaculture International.
2007; 15(2):153-61.
54. Torrecillas S, Makol A, Caballero MJ, Montero D, Robaina L, Real F, et al. Immune
stimulation and improved infection resistance in european sea bass (dicentrarchuslabrax) fed
mannan oligosaccharides. Fish&ShellfishImmunology. 2007; 23(5):969-81. In: Garcia F.
Suplementação alimentar com β-glucano e mananoligossacarídeo para tilápias do Nilo em tanquesrede. [tese]. Jaboticabal: Universidade Estadual Paulista, 2008. 120p. Doutorado em Aquicultura.
55. Genc MA, Aktas M, Genc E, Yilmaz E. Effects of dietary mannanoligosaccharideon growth,
body composition and hepatopancreashistology of penaeussemisulcatus (de haan 1844).
Aquaculture Nutricion). 2007; 13(2):156-61.
56. Garcia F. Suplementação alimentar com β-glucano e mananoligossacarídeo para tilápias do Nilo
em tanques-rede. [tese]. Jaboticabal: Universidade Estadual Paulista, 2008. 120p. Doutorado em
Aquicultura.
57. Swanson KS, Grieshop CM, Flickinger EA, Bauer LL, Healy HP, Dawson KA, et al.
Supplemental fructooligosaccharides and mannanoligasaccharides influence immune function, ileal
and total tract nutrient digestibilities, microbial populations and concentrations of protein
catabolites in the large bowel of dogs. J. Nutr. 2002; 132(5):980-9.
58. Strickling JA, Harmon DL, Dawson KA, Gross KL. Evaluation of oligosaccharide addition to
dog diets: influences on nutrient digestion and microbial populations. Anim. Feed Sci. Technol.
[periodico on line] 2000 [capturadoem: 24 out 2012]; 86(3-4):205-19. Disponível em:
http://www.journals.elsevierhealth.com/periodicals/anifee/article/PIIS0377840100001759/abstract
59. Zentek J, Marquart B, Pietrzak T. Intestinal effects of mannanoligosaccharides,
transgalactooligosaccharides, lactose and lactulose in dogs. J. Nutr. 2002; 132(6):1682S-84S.
60. Lynch HA, Martin SA. Effects of saccharomyces cerevisiae culture and saccharomyces
cerevisiae live cells on in vitro mixed ruminal microorganism fermentation. J. Dairy Sci. 2002;
85:2603-08.
61. Stanley VG, Brown C, Sefton AE. Comparative evaluation of yeast culture,
mannanoligosaccharide and antibiotic on performance of turkeys.Poult. Sci. 2000; 79(1):S186. In:
Spearman KR. Effect of mannan oligosaccharide (mos) suplementation on the immune status of
62. Marcolino MMK. Avaliação de atividade leishmanicida in vitro de heteropolissacarideos
ácidos: não sulfatados e naturalmente sulfatados. [dissertação]. Curitiba: Universidade Federal do
Paraná, 2010. 65p. Mestrado em Ciências-Bioquímica.
63. Cantos G, Barbieri CL, Iacomini M, Gorin PAJ, Travassos LR. Synthesis of antimony
complexes of yeast mannan and mannan derivatives and their effect on leishmania-infected
macrophages. Biochem. J. 1993; 289:155-160.
64. Badwey JA, Karnovsky ML. Active oxygen species and the functions of phagocytic leukocytes.
Ann. Rev. Biochem. 1980; 49:695-726. In: Marcolino MMK. Avaliação de atividade leishmanicida
in vitro de heteropolissacarideos ácidos: não sulfatados e naturalmente sulfatados. [dissertação].
Curitiba: Universidade Federal do Paraná, 2010. 65p. Mestrado em Ciências-Bioquímica.
65. Noleto GR. Efeito de manana, galactomanana e seus complexos com íon vanadilo sobre
macrófagos peritoneais de camundongos e leishmaniaamazonensis. [tese]. Curitiba:Universidade
Federal do Paraná, 2002. Doutorado. In: Marcolino MMK. Avaliação de atividade leishmanicida in
vitro de heteropolissacarideos ácidos: não sulfatados e naturalmente sulfatados. [dissertação].
Curitiba: Universidade Federal do Paraná, 2010. 65p. Mestrado em Ciências-Bioquímica.
66. MacMicking J, Xie QW, Nathan C. Nitric oxide and macrophage function. Ann. Rev. Immun.
1997; 15:323-50. In: Marcolino MMK. Avaliação de atividade leishmanicida in vitro de
heteropolissacarideos ácidos: não sulfatados e naturalmente sulfatados. [dissertação]. Curitiba:
Universidade Federal do Paraná, 2010. 65p. Mestrado em Ciências-Bioquímica.

Baixar este arquivo PDF - Faculdade Evangélica do Paraná

Transcrição

Documentos relacionados

DPT sediará curso de Sistema de Comando de Incidentes (SCI)

Resumo expandido SBZ 2008

ezferm - Enartis

Sistema de comando de incidentes

04 Um microrganismo industrial: exigências nutritivas da levedura

safale k-97

XXV CONGRESSO BRASILEIRO DE ZOOTECNIA ZOOTEC 2015

Biotecnologia Alimentar

Velcorin® – uma boa escolha para vinhos.

B99 - PET Engenharia Química - Universidade Federal de Uberlândia