MAST ASSURE ™ FEBRILE ANTIGENS
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MAST ASSURE ™ FEBRILE ANTIGENS
™ MAST ASSURE FEBRILE ANTIGENS Descrição e princípio do teste Suspensões de antigénios corados para testes Widal e Weil-Felix. Para a identificação e detecção quantitativa de anticorpos específicos no soro humano para fins epidemiológicos e diagnósticos, principalmente na investigação de pirexia e de infecções entéricas com determinados patogéneos de salmonelas, Rickettsiae e Brucellae. São adequados para ambos os testes: lâminas rápidas e de aglutinação em tubo. Conteúdo AENAS PARA USO EM DIAGNÓSTICO IN VITRO. O MAST ASSURE FEBRILE ANTIGENS™ são suspensões coradas de antigénios (ao menos marcadas) de bactérias mortas, coradas para aumentar as leituras dos testes de aglutinação. Os antigénios ‘O’ somáticos são corados de azul e os antigénios ‘H’ flagelares são corados de vermelho e estão disponíveis da seguinte maneira: Código P00002 P00004 P00006 P00008 P00010 P00011 P00012 P00014 P00016 P00018 P00020 P00022 P00024 P00026 P00030 P00032 Especificação Salmonella typhi H Salmonella H paratyphi A Salmonella H paratyphi B Salmonella H paratyphi C Salmonella typhi O Salmonella typhi Vi (unstained) Salmonella O paratyphi A Salmonella O paratyphi B Salmonella O paratyphi C Brucella abortus Brucella melitensis Proteus OX2 Proteus OX19 Proteus OXK Positive Polyvalent Febrile Control Negative Febrile Control Conteúdo 5ml 5ml 5ml 5ml 5ml 5ml 5ml 5ml 5ml 5ml 5ml 5ml 5ml 5ml 1ml 1ml Estabilidade e armazenamento Armazene fechado a 2-8°C em posição vertical até á data de validade mostrada na etiqueta da embalagem. Depois de aberto, o MAST ASSURE™ FEBRILE ANTIGENS deve ser armazenado a 2-8°C e pode ser usado até à data de validade marcada na etiqueta. Os reagentes podem sensíveis à luz. Não congele os reagentes. Avisos e precauções Apenas para uso em diagnóstico in vitro. Observe as precauções de perigo biológico aprovadas e técnicas assépticas. Para ser usado apenas por pessoal de laboratório adequadamente treinado e qualificado. Esterilize todos os resíduos biologicamente perigosos antes de eliminá-los. Os equipamentos não descartáveis têm que ser esterilizados após serem usados através de métodos apropriados. Os salpicos e derrames de material potencialmente infeccioso deve ser absorvido e eliminado da maneira acima descrita. O local do derrame deve ser esterilizado com desinfectante ou 70% de álcool. Não pipete com a boca. Os reagentes de controlo contêm soro de coelho. Os produtos contêm azida de sódio (0.095% w/w) e Tiomerosal™ (0.0095% w/w) como conservantes. Veja a ficha de dados de segurança do produto. Não inale ou ingira aerossóis lave os salpicos com muita água. Precauções analíticas: Não modifique os procedimentos de teste. Não dilua ou modifique os reagentes de maneira nenhuma. Permita que todas as amostras e reagentes atinjam a temperatura ambiente (18- 30°C) antes de usá-los. Não misture reagentes de diferentes lotes. Materiais necessários mas não fornecidos Amostras e equipamento microbiológico Standard tal como pequenos tubos de plástico ou de vidro, pipetas, lâminas de reacção com fundo branco. Agitadores e banhos a 37°C e 50°C. Procedimento A. Preparação das amostras Use amostras de soro frescas obtidas por centrifugação do sangue coagulado. As amostras de soro podem ser armazenadas a 2-8°C até 48 horas ou congeladas para períodos de armazenamento mais longo. Não use espécimes de plasma ou soro activados por calor, hemolisadas, lipémicas ou contaminadas. B. Procedimento de titulação rápida em lâmina 1. Usando uma pipeta, dispense 80l, 40l, 20l, 10l e 5l de soro não diluído numa fila de círculos de 3cm de diâmetro numa lâmina de reacção. 2. Agite o frasco de reagente de antigénio muito bem e adicione uma gota da suspensão de antigénio não diluído a cada aliquota de soro. 3. Misture bem usando um agitador e rode a lâmina. 4. Leia a aglutinação após um minuto. C. Procedimento de aglutinação em tubo Todos os resultados positivos da titulação rápida em lâmina devem ser confirmados usando a seguinte técnica. 1. Etiquete 8 pequenos tubos de plástico de um suporte. 2. Usando uma pipeta, dispense 1.9 ml de 0.85% solução salina no primeiro tubo, e 1.0 ml nos restantes sete. 3. Usando uma pipeta, dispense 0.1 ml do soro não diluído do paciente no primeiro tubo. 4. Misture bem o conteúdo com a pipeta. Não crie bolhas de ar. 5. Dispense 1.0 ml do primeiro tubo no segundo tubo e misture bem. 6. Continue este método de duplicar as diluições até ao sétimo tubo e depois descarte 1.0 ml do sétimo tubo. O oitavo tubo irá conter apenas solução salina como controlo e por isso, não pode ter soro algum. 7. Agite bem o frasco de reagente de antigénio antes de o usar e adicione depois uma gota da suspensão de antigénio apropriada a cada tubo e misture bem. 8. Incube os tubos da seguinte maneira: • antigénios Salmonella “O” e Proteus durante 4 horas a 50°C. • antigénios Salmonella “H” durante 2 horas a 50°C. • Antigénio Brucella durante 24 horas a 37°C. • Salmonella typhi Vi durante 2 horas a 37°C. Deixe todos os tubos no frigorífico durante a noite depois deixe que atinjam a temperatura ambiente antes de ler os resultados. NB: é muito importante que quando os tubos são colocados no banho de água, o nível da água deve chegar a cerca de 2/3 acima do nível do conteúdo dos tubos. Isto mantém as correntes de convecção dentro do tubo e previne resultados falsos. 9. Analise os tubos após o tempo de incubação apropriado e verifique se há aglutinação. Interpretação dos resultados Procedimento de titulação rápida em lâmina Aglutinações vistas em quailquer um dos círculos dos cartões de reacção é indicativo dos seguintes resultados num teste de procedimento de aglutinação em tubos. Desta maneira o procedimento de titulação em lâmina dá uma aproximação aos resultados esperados num procedimento de aglutinação em tubo. Volume Resultados 80l 1:20 40l 1:40 20l 1:80 10l 1:160 5l 1:320 É importante que todas as aglutinações nas lâminas de teste sejam conduzidas para permitirem que qualquer efeito “prozone” (onde as concentrações mais altas do soro podem dar um resultado negativo mas as diluições seguintes podem dar um resultado positivo) seja reconhecido e ignorado. Procedimento de aglutinação em tubo Os tubos devem ser lidos após o tempo de incubação recomendado para eliminar a possibilidade de resultados falsos. Um resultado negativo e o controlo salino não devem apresentar nenhuma mudança em aspecto e devem mostrar um “swirl” quando virados ao contrário. Não deve abanar os tubos. Um teste positivo mostrará uma aglutinação flocular óbvia através do tubo. Os últimos tubos que apresentem sinais de aglutinação devem ser considerados como os títulos para esse teste. Limitações de uso Descobriu-se que muitos serotipos de Salmonella possuem antigénios somáticos do mesmo tipo. Por isso, a aglutinação de qualquer antigénio de Salmonella com o soro humano não deve ser prova de infecção por um organismo particular, mas sim como uma infecção causada por um organismo com uma estrutura antigénica similar. Os tubos devem ser lidos após o tempo de incubação recomendado para eliminar a possibilidade de resultados falsos. O último teste que apresente sinais de aglutinação deve ser tratado como o titulo para esse teste. Para resultados negativos, todos os testes devem estar livres de aglutinação. Muitas populações ou comunidades podem apresentar níveis altos de anticorpos residuais, muitas vezes em excesso de 1/80 – 1/160. Os pacientes também podem apresentar níveis altos de anticorpos residuais de infecções prévias. Para que um teste tenha importância clínica deve ser demonstrado um aumento no título e não apenas um titulo elevado num único teste. Doenças crónicas do fígado também causam um aumento do titulo dos anticorpos de salmonella. Devem-se evitar amostras altamente lipémicas, hemolíticas ou contaminadas. Características de Desempenho A capacidade de desempenho geralmente aceite do teste Widal usando antigénios febris é 70% de especificidade e de sensibilidade. Como os testes serológicos usados no diagnóstico de infecções por Salmonella tem limitações importantes, normalmente são preferidas culturas de espécimes apropriados. Controlo de qualidade Recomenda-se que o controlo de qualidade seja efectuado em intervalos regulares com controlos febris positivos e negativos, para verificar que o teste está a funcionar correctamente. Não use os reagentes se estes apresentarem sinais de deterioração. Referências Bibliografia disponível a pedido. IFU034 PM 02/09 V1 MAST é uma Marca registada
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